Черный фон для фш: Фоны для Фотошопа: черные

15.08.1970 alexxlab

Содержание

Как сделать черный фон в Фотошопе

Во время работы с картинками в Фотошопе нам зачастую требуется заменить фон. Программа никаким образом не ограничивает нас в видах и цветах, поэтому менять исходное фоновое изображение можно на любое другое.

В этом уроке обсудим способы создания черного фона на фотографии.

Создание черного фона

Существует один очевидный и несколько дополнительных, быстрых способов. Первый – вырезать объект и вставить его поверх слоя с черной заливкой.

Способ 1: вырезание

Вариантов того, как можно выделить, а затем вырезать картинку на новый слой несколько, и все они описаны в одном из уроков на нашем сайте.

Урок: Как вырезать объект в Фотошопе

В нашем случае, для простоты восприятия, применим инструмент «Волшебная палочка» на простейшей картинке с белым фоном.

Урок: Волшебная палочка в Фотошопе

Берем в руки инструмент.
Для ускорения процесса снимем галку напротив «Смежных пикселей» на панели параметров (вверху). Это действие позволит нам выделить сразу все участки одного цвета.
Далее необходимо проанализировать картинку. Если у нас фон белый, а сам объект не однотонный, то кликаем по фону, а если изображение имеет одноцветную заливку, то имеет смысл выделить именно его.
Теперь вырезаем (копируем) яблоко на новый слой при помощи сочетания клавиш CTRL+J.
Дальше все просто: создаем новый слой нажатием на значок внизу панели,
Заливаем его черным цветом, воспользовавшись инструментом «Заливка»,
И помещаем под наше вырезанное яблоко.

Способ 2: самый быстрый

Этот прием можно применять на картинках с простым содержанием. Именно с такой мы и работаем в сегодняшней статье.

Нам потребуется вновь созданный слой, закрашенный нужным (черным) цветом. Как это делается, уже было описано чуть выше.
С этого слоя требуется снять видимость, кликнув по глазу рядом с ним, и перейти на нижний, исходный.
Далее все происходит по описанному выше сценарию: берем «Волшебную палочку» и выделяем яблоко, либо используем другой удобный инструмент.
Возвращаемся на слой с черной заливкой и включаем его видимость.
Создаем маску, нажав на нужный значок в нижней части панели.
Как видим, черный фон удалился вокруг яблока, а нам нужно обратное действие. Чтобы его выполнить, нажимаем сочетание клавиш CTRL+I, инвертируя маску.

Вам может показаться, что описанный способ сложен и требует много времени. На самом деле, вся процедура занимает менее одной минуты даже у неподготовленного пользователя.

Способ 3: инверсия

Отличный вариант для изображений с абсолютно белым фоном.

Делаем копию исходной картинки (CTRL+J) и инвертируем ее так же, как и маску, то есть нажимаем CTRL+I.
Далее имеются два пути. Если объект однотонный, то выделяем его инструментом «Волшебная палочка» и жмем клавишу DELETE .
Если же яблоко разноцветное, то кликаем палочкой по фону,
Выполняем инвертирование выделенной области сочетанием клавиш CTRL+SHIFT+I и удаляем ее (DELETE).

Сегодня мы изучили несколько способов создания черного фона на изображении. Обязательно потренируйтесь в их использовании, так как каждый из них окажется полезен в конкретной ситуации.

Наиболее качественным и сложным является первый вариант, а другие два экономят уйму времени при работе с простыми картинками.

Мы рады, что смогли помочь Вам в решении проблемы.
Опишите, что у вас не получилось. Наши специалисты постараются ответить максимально быстро.

Помогла ли вам эта статья?

ДА НЕТ

Черный фон для Фотошопа: скачивайте или делайте сами

Доброго времени суток, уважаемые читатели моего блога. Продолжаем улучшать картинки на своем сайте при помощи Photoshop. Благодаря этому уроку вы можете создать дизайн впечатляющего списка товаров для интернет-магазина или фотогалереи.

Конечно, полезные советы из этого урока вы можете применить и для других целей. Например, создать красивое профессиональное фото для своей подруги или подготовить крутой подарок для начальника.

В любом случае сегодня мы будем говорить про черный фон для фотошопа: как его нарисовать самому, где искать готовые образцы и вставить в свое изображение. Я покажу два метода. Один понравится тем, кому хочется творить; другой порадует любителей быстрых решений.

В конце этой публикации вы можете найти видео, которое сократит время чтения или дополнит его визуально. Как поступить, читать или сразу перейти к просмотру – решать вам. Я же приступлю к описанию процесса.

Если вы всерьёз задумываетесь о изучении работы с фотошопом, то рекомендую присмотреться именно к вот этому хорошему курсу — «Фотошоп с нуля в видеоформате VIP 3.0». Я учился по его предыдущей версии и периодически возвращаюсь к нему, что бы вспомнить те или иные возможности этой классной программы.

Творческий метод

Разработчикам на заметку. В качестве примеров для работы с картинками в фотошопе, я, как правило, использую картинки из Aliexpress. Если вы делаете свой сайт, то благодаря ним у вас не возникнет проблем с авторскими правами. Просто вставляете ссылку и скриншот может выступать в качестве рекламного материала.

Убиваете сразу двух зайцев: товар может понравиться кому-то из читателей и проблем с законом у вас не возникнет. Сегодня я нашел [urlspan]двустороннюю флешку[/urlspan], которую можно вставить как в телефон, так и в компьютер. На мой взгляд – очень удобно. К тому же, учитывая как часто мы стали пользоваться всякими гаджетами, еще и невероятно полезно.

[urlspan][/urlspan]

Но, если для вас этот вариант не подходит, и вы хотите скачать бесплатные изображения, могу предложить прочитать мою статью о том, где искать картинки, чтобы не бояться нарушить закон об авторском праве.

Я взял прямоугольное изображение и мне не нужно обрабатывать края. Если у вас нестандартная картинка, например, портрет, прочитайте статью о том, как правильно вырезать объекты на фотографии. Она очень подробная, вы быстро научитесь выполнять эту задачу профессионально.

Первым делом мне нужно создать новый слой. Это будет задний фон изображения, который мне и предстоит сделать черным. В меню слоя я просто щелкаю по кнопке «Создать новый слой». Эту же задачу вы можете решить при помощи сочетания клавиш Shift+Ctrl+N.

Пока этот слой находится над моей картинкой, он будет его перекрывать. Если я сейчас что-то нарисую на нем, то этот объект будет находиться не сзади скриншота с флешкой, а прямо на нем. Мне нужно поместить слой под фотографию.

По идее, сделать это можно просто перетащив его мышью вниз, но сперва нужно убрать замочек рядом с нижнем слоем, на котором располагается фото. Эти действия откроют его для редактирования. Только после этого со слоем можно будет работать.

Под цифрой 1 я показал как у вас должно получиться. Щелкните по нижнему слою, чтобы он подсветился. Таким образом вы его активируете. Это будет означать, что все изменения, которые вы будете применять, будут относиться именно к нему, а не к основному объекту.

Теперь возьму инструмент «Рамка».

Мне нужно увеличить слой, чтобы он «вылезал» за пределы основной фотографии. Тогда черный фон будет видно.

Теперь выбираю инструмент заливка. Чтобы открыть дополнительное меню инструментов, я просто на несколько секунд задерживаюсь на той или иной кнопке.

Ставлю черный цвет и щелкаю по фото.

Симпатично, но не слишком интересно. Сейчас я покажу как сделать фон более красивым. Для этого беру градиент, щелкаю по плашке с цветом и выставляю оттенки от более черного к менее. Если хотите научиться делать плавный переход цвета с умом, прочитайте статью об этом в моем блоге.

Мне бы хотелось сделать текстуру более красочной. Сперва я добавлю шум, а потом сделаю его размытым. Захожу во вкладку «Фильтр», нахожу здесь «Шум» и щелкаю по нему.

Вы можете попробовать и другие варианты. Мне, например, нравятся еще и пыль и царапины, облака и волокна в разделе «Рендеринг». Экспериментируйте.

В принципе, и такой эффект уже выгладит не плохо, но можно сделать еще лучше.

Снова перехожу в «Фильтры», затем «Размытие» и жму на «Размытие по Гауссу». Это один из самых распространенных эффектов. Естественно, вы можете попробовать все, что так есть. «В движении» тоже выглядит не плохо.

Выставьте ползунок таким образом, чтобы эффект вас удовлетворил. Все зависит от разрешения картинки.

На саму иллюстрацию я добавлю тень, чтобы она возвышалась над фоном. Перехожу в «Параметры наложения» и кликаю на «тень».

Что меня здесь интересует? В первую очередь угол. Щелкайте без стеснения, смотрите как будет перемещаться тень на рисунке справа. Как правило, помимо этого я редактирую смещение, размах и размер. Все зависит от размера картинки.

Если вы работаете с «живой» фотографией, то помните, что в природе черных теней не бывает. В верхней части панели, под режимом наложения, есть плашка с цветом. Можете поменять его на серенький, желтый или любой другой. В зависимости от превалирующего оттенка на картинке.

Вот такой результат у меня получился.

Теперь вы знаете как работать без готового рисунка фона. Но есть метод попроще и побыстрее. Сейчас я расскажу о нем.

Скачать готовый фон

Вы можете скачать готовые фоны из интернета и вставить их на собственную картинку, если работаете не для публики, то бояться вам нечего. Главное знать как именно их искать.

Я рекомендую вбивать в поисковик черные обои для рабочего стола или черные текстуры. Как правильно скачать? Щелкните по эскизу, чтобы он немного увеличился, а лишь затем сохраняйте. Только в этом случае вы получите большой размер.

Вот отличная подборка от Google — перейти и скачать. Но можете поискать подходящие варианты и в Яндексе.

Простой и быстрый метод

Первые шаги не будут отличаться. Вам нужно открыть фотографию, разблокировать ее (нажать на замочек), создать новый слой и перетащить его под основную иллюстрацию. Далее перенесите картинку из папки в ваше изображение. Почему нужно делать именно так я уже писал в статье как правильно увеличить размер картинки.

Растяните картинку. Готово. Будьте внимательны. Новый слой с фоном должен находиться под основной иллюстрацией.

Ну вот и все.

Можете посмотреть видео, чтобы убедиться, что все сделано правильно. Не обессудьте, для его создания я выбрал другую картинку. Скриншот со страницы bluetooth маяка, который можно повесить на те предметы, которые вы боитесь потерять. Вешаете его на ключи или пульт от телевизора и сможете заставить пищать, в том случае, если внезапно потеряете.

Видео инструкция

Ну вот и все. Желаю вам успехов. И если вам понравилась эта статья – подписывайтесь на рассылку и узнавайте больше о работе с фотошопом. Пусть каждый день делает вас лучше.

Черные фоны для фотошопа. Как сделать черный фон в фотошоп

Инструкция

Загрузите в графический редактор картинку, для которой необходим прозрачный фон, любым привычным для вас способом. Можете развернуть контекстное меню щелчком по иконке файла и выбрать Photoshop из списка программ. Если окно графического редактора уже открыто, нажмите сочетание клавиш Ctrl+O или воспользуйтесь опцией Open меню File. Кликните два раза по слою с изображением и нажмите на кнопку ОК диалогового окна. Теперь у вас есть возможность редактировать картинку.

Отделите рисунок от старого фона. Выбор способа, которым вы это сделаете, зависит от характера изображения: однотонный предмет несложно выделить инструментом Magic Wand или опцией Color Range, объект с четким контуром без мелких деталей прекрасно обводится инструментом Polygonal Lasso. Для многоцветных изображений с более сложными очертаниями можно нарисовать маску вручную или убрать фон фильтром Extract.

Для выделения фона или объекта инструментом Magic Wand введите величину параметра Tolerance в панель настроек под главным меню. Для корректной обработки одноцветного фрагмента вполне достаточно величины в десять единиц. Увеличив значение этого параметра, вы получите возможность выделить большее количество цветов.

Похожим образом работает опция Color Range меню Select. Откройте ее настройки и кликните по цвету, на основе которого собираетесь создавать выделение. Если объект или фон не оказались выделены полностью, передвиньте вправо регулятор величины Fuzziness.

Если предмет, который должен находиться на прозрачном фоне, имеет сложные очертания, продублируйте слой с картинкой клавишами Ctrl+J и откройте фильтр Extract опцией из меню Filter. Обведите контуры предмета инструментом Edge Highlighter. Внутреннюю область картинки залейте инструментом Fill. Применив кнопкой ОК результат действия фильтра на изображение, загрузите выделение из обработанного слоя, кликнув по его иконке при зажатой клавише Ctrl.

На основе созданного тем или иным способом выделения создайте маску, нажав для этого на кнопку Add layer mask, находящуюся в нижней области палитры слоев. Работая с выделением, сделанным при помощи фильтра Extract, вернитесь на слой с исходной версией

картинки .

Если созданная маска скрыла предмет, а не фон, примените к ней опцию Invert группы Adjustments меню Image. Некорректно созданную маску можно доработать инструментом Brush. Закрасьте черным участки картинки , которые должны быть скрыты. Фрагменты, которые должны остаться видимыми, но оказались прозрачными, прокрасьте по маске белым цветом.

Применив опцию Save As меню File, сохраните картинку с прозрачным фоном в файл png.

Источники:

Инструмент «Волшебная палочка» (Magic Wand)

При помощи фотошопа можно не только совершать многочисленные манипуляции с любыми изображениями, но так же и создавать такие изображения самостоятельно. Для этого вам не понадобится уйма времени либо владение специальными навыками. Создание такой картинки не займет у вас более 10 минут. Давайте рассмотрим данную процедуру на примере создания столь популярного ныне формата картинок — аватар.

Вам понадобится

Инструкция

Аватар – это небольшое квадратное изображение, которое представляет вас на форумах, социальных сетях и разнообразных сайтах. Как правило, его размер не превышает 150х150 px. Создайте в е новый и при создании укажите размеры – например, 120 на 120 пикселей. Разрешение (resolution) может быть небольшим, а цветовая обязательно должна быть RGB.

После того, как пустой документ нужного размера создан, откройте фото или рисунок, из которого вы хотите сделать . Скадрируйте хотя бы загруженную , обрежьте ее до того фрагмента, который хотите видеть на , с помощью инструмента Crop. Затем продублируйте слой с кадрированным изображением, а копию перетащите на заготовку для аватара.

Каждый, кто занимается время от времени фотомонтажом и редактурой фотографий в Фотошопе, знает, насколько важно пользователю Фотошопа иметь наработанный навык вырезания тех или иных объектов из фона, а также замены прежнего фона изображения любым другим. Для разных целей подходят разные фоны, и иногда требуется посмотреть на то, как будет выглядеть ваше изображение на обычном черном фоне. Поместить рисунок или фигуру человека на простой черный фон в Фотошопе очень просто – для этого вам нужно выполнить всего несколько действий.

Инструкция

Откройте изображение, на котором вы хотите заменить оригинальный фон на черную заливку. Создайте дубликат слоя (Duplicate layer) и сделайте слой с оригиналом изображения невидимым, нажав на изображении слоя в палитре пиктограмму глаза.

Теперь на панели инструментов выберите Background eraser tool (ластик, позволяющий стирать фон), установите размер ластика, подходящий к вашему изображению, выберите достаточную жесткость и в строке «Допуск» установите значение 40%.

После этого аккуратно начинайте стирать фон вокруг вашего объекта, предварительно наведя на него курсор мыши с ластиком и щелкнув правой кнопкой. Когда вы удалите основные области фона, уменьшите размер кисти и снизьте уровень жесткости, чтобы более аккуратно вырезать фоновые цвета по силуэту вашего объекта.

Полностью удалив фон вокруг объекта, выберите инструмент заливки (Fill) на панели инструментов и, создав новый слой, залейте очищенную от фона область черным цветом. Увеличьте масштаб изображения и внимательно рассмотрите его на предмет недочетов в предварительной очистке фоновой области.

Если вы увидите оставшиеся от предыдущего фона точки и пятна, снова возьмите фоновый ластик и пройдитесь по всем нежелательным пятнам.

Как видите, создать простой черный фон совсем не сложно, и если вам понадобится, вы в любой момент можете заменить его на другое фоновое изображение.

Как в фотошопе сделать черный и белый фон правильно

Чаще всего люди и разные предметы фотографируются на белом фоне. Также популярна съемка на природе. На черном фоне фотографирование производится гораздо реже. Объяснение этому кроется в дороговизне такой съемки. Приобрести правильное освещение и черные декорации могут позволить себе лишь успешные фотостудии. Но отправить тот или иной объект на черный фон можем и мы. Для этого потребуется лишь программа Adobe Photoshop.

Фотошоп: черно белый фон

Давайте представим, что мы сфотографировали пару яблок на белом фоне. Это сделать очень легко, достаточно приобрести большой лист бумаги (ватман подойдет идеально) и пару настольных ламп приличной мощности. Если же нам нужен черный фон, то всё гораздо сложнее. При использовании вспышки любая темная поверхность будет не такой черной, как нам бы хотелось. Именно поэтому лучше задействовать графический редактор, виртуально сменив белый фон на черный.

После открытия изображения в Фотошопе взгляните на панель «Слои». Если она не открыта, то нажмите клавишу F7 или загляните в меню «Окно». В панели «Слои» необходимо нажать кнопку «Создать новый слой». В нашем случае он будет выполнять роль черного фона. Фотошоп работает именно так.

Теперь нажмите клавишу D. Это сбросит цвета рисования на использующиеся по умолчанию. Значит, цветом фона (ластика) станет белый, а основным цветом — черный. Созданный вами слой сейчас должен быть активен (выделен на палитре «Слои»). Выберите инструмент «Перемещение» и нажмите сочетание клавиш Alt+Backspace. Это мгновенно зальет весь слой черным цветом.

Сделать черный фон в Фотошопе

Однако квадрат Малевича нам не нужен, нам необходимо сделать черный фон в Фотошопе. Дважды щелкните в панели «Слои» по фоновому слою. Вам будет предложено сменить название «Фон» на «Слой 0». Воспользуйтесь этим предложением. Так вы разблокируете данный слой, что позволит совершать с ним любые действия.

Перетащите данный слой поверх залитого черным цветом. Не забудьте его выделить, сделав активным. А теперь всё зависит только от ваших навыков и типа фотографии. Вы можете использовать разные инструменты для выделения того или иного объекта (в нашем случае — это яблоки). Новичкам можно посоветовать инструмент «Быстрое выделение». Но его следует использовать только на таких снимках, которые похожи на наш пример. В случае с неоднородным фоном могут возникнуть некоторые проблемы. Если на белом фоне сфотографирован простейший объект, то никто не мешает задействовать инструмент «Волшебная палочка». Он позволяет выделить предмет за один клик.

Справиться с более сложными объектами поможет «Магнитное лассо». Этот инструмент предназначен для выделения объекта по его контуру. Какой бы вы инструмент не выбрали — результат будет один, нужный вам предмет окажется выделенным. Остается лишь сделать фон черным. В Фотошопе для этого нужно сначала указать, что именно считается фоном.

Когда объект будет выделен — нажмите сочетание клавиш Ctrl+Shift+I. Либо пройдите по пути «Выделение-Инвертировать выделение». После этого у вас окажется выделено всё, за исключением самого объекта. Дальнейшие действия понятны даже начинающему пользователю Photoshop. Нужно удалить выделенную нами область, для чего требуется нажатие клавиши Delete. Или Backspace, если вам так удобнее.

Большая часть работы сделана. Пройдите по пути «Выделение-Отменить выделение». Без всякого сомнения, вы заметите некоторые шероховатости на границах объекта. Можно даже сказать, что получился черно белый фон в Фотошопе. Удалить белые участки поможет ластик, нужно лишь правильно подобрать его размер и жесткость.

Добиться идеального результата позволит использование инструмента «Размытие». Подберите правильный диаметр кисти и пройдитесь по контуру объекта. Это значительно смягчит контраст на краях. Затем останется лишь объединить слои (Ctrl+Shift+E) и сохранить изображение в нужном вам формате.

Такая вот картинка у нас получилась на выходе. В первое время вам могут показаться все эти действия слишком долгими. Но на самом деле наибольшее время занимает выделение. Когда вы научитесь совершать данное действие быстро, то и добиваться черного фона не составит труда.

Сделать черный фон в Фотошопе

Это урок для новичков, и в нем я покажу, как сделать вот такой эффект выхода из темноты, из обычной фотографии. Якобы луч света выхватывает человека или предмет из темноты. Такой довольно стильный эффект и просто делается. А в конце урока я покажу, как добавить вот такие свечи, буквально за одну секунду, ничего не вырезая. И вы можете, если вам интересно, прямо сейчас переключится с помощью тайм кодов в описаниях к видео.

Итак, приступим к основной обработке. Мне почему-то нравится больше, когда фото вертикальное, такой эффект смотрится лучше. Поэтому создаем вертикальное фото, Файл, вкладку Создать и задаем размер 1000 на 1500. Если у вас другим цветом, то заливкой просто залейте черным цветом. Теперь переносим девушку на этот фон, выделяя прямоугольную область и инструментом перемещения.

Теперь нам ее необходимо вырезать, но здесь необязательно все делать супер качественно, потому что у нас край девушки будет тонуть в темноте. Можно просто грубо вырезать, то есть мы берем инструмент Лассо и обводим. Нажимаем Уточнить край, и здесь у меня размер 35- это размер кисточки уточняющий, который используется для обнаружения краев. Так просто мы уточняем, вокруг грязь остается, но на это не обращаем особого внимание. Нажимаем ОК. Теперь добавляем корректирующий слой Кривые. Внизу кнопку нажимаем, выбираем вкладку и посередине вытягиваем кривую в низ, вот примерно до такого эффекта, закрываем.

Теперь берем кисть черного цвета, непрозрачность ставим где-то 40- 50%, нажим тоже ставим на 50%. Подгоняем диаметр кисточки, это можно делать клавишами квадратных скобок и высветляем кожу. Удаляем корректирующий слой там, где нам нужно, на волосах чуть-чуть, чтобы волосы проявились. Проявляем те части лица волос и тела, которые нам нужны. А здесь у нас еще осталась грязь вокруг, поэтому мы переходим на этот слой и можем подправить кисточкой. Берем кисть черного цвета и здесь подправляем, Непрозрачность можно поставить 100%, убираем грязь. Если вы кистью где-то намазали то, можно переключиться на белый цвет, и обратно все восстановить.

Внизу нам нужно сделать так, чтобы край был красивым. Для этого мы остаемся в режиме «маска» и выбираем инструмент Градиент. Проверьте, чтобы цвета были выставлены от белого к черному. Необходимо чтобы стоял Линейный градиент, режим нормальный, Непрозрачность — 100%. Рисуем такую линию, и у нас часть девушки стирается, но не просто стирается, а с таким переходом, потому что кисточкой это будет не так симпатично. В принципе можно и кистью это сделать, если вам так будет удобно. Ставим мягкую кисть, жесткость выставляем ноль и просто прорисовать.

Теперь я перейду на верхний слой и добавлю еще один корректирующий слой яркость/контрастность. Здесь я немножко уберу яркость и поиграюсь с контрастностью. Контрастность практически на максимум, так получается эффектней. Видите разницу?

Теперь добавляем последний корректирующий слой Карта градиента, и выбираем градиент от фиолетового к оранжевому. Если у вас девушка наоборот синяя, то здесь инверсию можно убрать, нажимаем ОК. Режим в правой консоли выбираем Мягкий свет и непрозрачность снижаем примерно до 27%. Вообще для большего эффекта я бы перекрасила платье в красный цвет, это тоже просто сделать.

Корректирующий слой, цвет и режим умножения. Теперь заливаем маску черным цветом, Ctrl+i нажимаем, и белым цветом открываем маску только на платье, то есть кисточку с белым цветом. Не стала показывать весь процесс. По перекраске платья у меня есть отдельный урок, как заменить цвет. Смотрите, если вам интересно.
Здесь можно еще сделать прорисовку теней, и другую любую стилизацию, какие-то текстуры сверху положить, кисточкой краски положить вокруг. В общем, экспериментируйте.

Сейчас я покажу, как добавить свечи, как и обещала в начале урока. Находим в сети свечи, что важно на черном фоне и просто перетаскиваем на нашу картинку, инструментом перемещения. Подгоняем размер свободным трансформированием, либо Ctrl+t, располагаем. И меняем режим расположения слоя на экран, так примерно получается. Если у вас тут какая-то полоска видна, то просто ластиком можете вокруг пройтись, удалить. Теперь делаем свет, от свечей должен быть свет, копируем этот слой, Ctrl+J нажимаем и Фильтр / Размытие / Размытие по Гауссу. Так сильно размываем, чтобы у нас получилось пятно.

Как сделать черный фон в Фотошопе • Дигмаст

Спасибо за просмотр!

Почему PNG с черным фоном: решено — МирДоступа

Почему же PNG-изображение может иметь черный фон вместо прозрачного? Давайте разбираться!

Черный фон PNG может появляться в самых разнообразных условиях. Чтобы избежать этого глюка нужно придерживаться нескольких правил.

Вообще изображение с прозрачностью сперва нужно сохранить на жесткий диск, затем — удостовериться в том, что оно имеет альфа-канал (прозрачность). Только после этого его можно открывать в Adobe Photoshop: перетаскиванием в окно редактора или при помощи команды «Открыть с помощью»

Следует помнить о том, что буфер обмена, который используется при способе «Копировать-Вставить», не поддерживает прозрачность. Именно поэтому сперва изображение нужно сохранить на жесткий диск и только после этого пользоваться командой Открыть Файл (Open File — в англоязычной версии редактора) в Photoshop.

А вот Paint, например, вообще не поддерживает альфа-канал и поэтому сохранить изображение в данной программе с прозрачностью невозможно.

Изображение в формате PNG всегда поддерживает прозрачность. Если появляется черный фон PNG нужно ещё раз удостовериться, что оно было открыто и сохранено корректно.

Если черный фон в PNG появляется используйте следующий алгоритм открытия:

Cкопируйте адрес изображения из поисковой строки браузера и сохраните изображение на жесткий диск
Откройте Photoshop и при помощи команды Файл->Открыть (либо при помощи одновременного нажатия клавиш Сtrl-О) открываем изображение PNG, которое мы сохранили на компьютер. Также можно ввести URL-адрес в диалоговом окне в строку имени файла.
Photoshop произведёт загрузку изображения и сохранит его во временный файл. Теперь черный фон PNG появляться не должен.

Таким образом, если фотография или другой изображение в PNG не имеет прозрачности нужно внимательно изучить алгоритм его открытия и лишь потом приступать к его редактированию.

Черный фон PNG на OS X

Диалоговое окно Open File/Sheet не имеет строки, куда можно было бы ввести url-адрес. В этом случае необходимо загрузить файл вручную и скопировать его на жесткий диск — можно использовать перетаскивание файла на рабочий стол.

Новый файл теперь нужно перетащить в Photoshop или Dock. После — удаляем временный файл. Вопрос почему png с черным фоном можно считать закрытым.

На операционных системах OS X и Windows изображение с прозрачностью можно скопировать исключительно из браузера Chrome (или из Safari на OS X). Кроме этого редактора также должен поддерживать работу с альфа-каналами

Помните о том, что фон в PNG — это не глюк системы и не проблема редактора Photoshop. Иногда изображение может быть не с прозрачностью, а с фоном. В таком случае перейдите во вкладку «Настройки» и установите прозрачный фон. Проверьте каналы — там должен быть отдельный альфа-канал.

Таким образом, ответ на вопрос почему появляется черный фон PNG вполне понятен…

Черный фон для фотошопа

Мешковина, вымазанная сажей, пополнит клипарт коллекцию готичных фонов для фотошопа.

Роскошный черный шелк с антрацитовым блеском мягких складок.

Красивый черный фон для фотошопа в виде перфорированной стальной пластины.

Белые ветви с листьями извиваются на темном фоне с проявляющимися контурами роз.

Угольно-черные складки тафты станут отличным пополнением мрачной коллекции клипарта для оформления готики.

Старая кожа.

Капельки дождя похожи на крохотные бриллианты, отскакивающие от кругов на лужах.

Черный деревянный щит подойдет для клипарт коллекции фонов, чтобы создать картинку на мистическую тему.

Черный фон с узорами.

Стена из искусственного камня.

Черные цветы на старой ткани.

Черная джинсовая ткань.

Темный винтажный фон.

Вертикальные полоски.

Вязанная шерстяная нить.

Красивая векторная черная основа под открытку или коллаж.

Текстура фольга.

Свет прожектора в ночи.

Черный металл.

Обои в темноте.

Кожаные квадраты.

Кожа крокодила.

Работа с фоном, способы замены и создание маски картинки

Фон или Бэкграунд– фундамент и базовый элемент любого изображения. Он выделяет объект, расставляет акценты и дает волю всевозможным идеям, чтобы выполнить поставленную перед тобой задачу.

Не всегда есть возможность сфотографировать нужный объект или модель на требуемом фоне. Белый фон, как правило – является уникальный элементом, для работы с ним в фотошоп. На его фоне объекты контрастны и их удобно вырезать, что ты и будешь делать в этом уроке.

В Adobe Photoshop ты можешь поправить, заменить или сделать более заметным как фон, так и передний план фотографии. Это достаточно простой процесс, необходимо лишь выполнить несколько шагов. Урок для начинающих.

Создаем светлый фон

Шаг 1

Возьми фото, в котором требуется заменить фон. Наибольшую проблему, обычно представляют собой – волосы, шерсть, перья или пух. Они обладают мелкими деталями, с которыми сложно работать, однако задача выполнима. Открой фотографию, с которой ты будешь работать, разблокируй его и создай дубликат.

Шаг 2

Выдели объект при помощи инструмента «Лассо» (> Lasso Tool) или клавиша «L». Действуй аккуратно и применяй горячие клавиши. Старайся не трогать пока что цвет. Но если уж очень охота, то как делать картинку светлее или темнее.
Способов выделений есть несколько: при помощи цвета — «Выделение» – «Цветовой диапазон» (> Select > Color Range). В новом окне выбери пипетку и и щелкни по нужному цвету, регулируя ползунками области выделения.

Шаг 3

Делаем сглаживание краев. Иди: «Выделение» — «Модификация» — «Растушевка» (Select > Modify > Feather). Чем больше разрешение изображения, тем больше будут значения растушевки.

Шаг 4

Жмешь «Инверсия выделенной области» и удаляешь выделенный фон.

Шаг 5

При помощи «Ластика» (> Eraser Tool, небольшой жесткости) правишь неточности краев.

Как сделать маску?

Шаг 6

Делай маску изображения – это специальный метод выделения области изображения. Маски бывают двух видов «Быстрая маска» (> Quick Mask) и «Маска слоя» (> Layer Mask) – с ней ты будешь работать. Щелкни курсором на слой с фоновым изображением и включи его. Выделенный контур останется.

Шаг 7

В работе с маской нужно задействовать кисточки – зажми клавишу «В». Для выбора белого и черного цвета по умолчанию зажми клавишу «D». Смысл следующий – если ты рисуешь белым цветом, то появится изображение, которое находится сверху, если черным, то нижнее. Чтобы увидеть. как выглядит твоя маска – зажми «Alt» и кликни по пиктограмме маски слоя.

Шаг 8

Теперь тебе нужно применить режимы наложения слоя с фоном. Жми «Умножение» (> Multiply). Эффект будет словно изображение наложили друг поверх друга. Произойдет замена фона.

Шаг 9

Переключись на маску слоя и возьми мягкую кисть. Обводи белые края, стараясь не залазить на волосы. Да, это требует усидчивости, и чем больше ваше изображение – тем больше времени на него ты потратишь. Учимся делать все аккуратно.

Шаг 10

В любое время ты можешь подправить маску слоя. Скажем, если при перенесении на новый фон, объект все еще будет с белой каемкой – его можно исправить.

Создаем темный фон

Шаг 11

Итак, как сделать черный фон в фотошопе? Для черного фона очень важно чтобы объект находился на достаточном расстоянии от фона, а сам фон не должен быть осветленным. Как и в случае с белым фотоном – создаем маску слоя и меняем режим наложения – жми «Осветление» (> Screen). Данный режим осветлит изображение

Шаг 12

Перейди на маску слоя так же, как делал это в случае с белым фоном. Бери мягкую кисть и устраняй черную окантовку возле труднодоступных мест. Весь процесс должен быть аккуратен и результат – эстетичен. Заливаешь фон черным.

Создание фона для нового изображения

Шаг 13

Открой фотошоп и открой изображение в нем.

Шаг 14

Зайди в «Файл» — «Создать» (> File > New) — меню в верхнем левом углу окна и создай новый файл. Или комбинация клавиш – «Ctrl+N».

Шаг 15

Нажми на выпадающий список «Содержимое фона» (> Background Contents) и выбери из этого списка тип фона, который хочешь использовать. Здесь есть:

«Белый» (> White) — создает белый фон.

«Цвет фона» (> Background color) — создает фон цвета, который выбран на палитре слева, в меню рабочего пространства.

«Прозрачный» (> Transparent) – делает прозрачный фон, который идеально подходит для изображений форматов GIF или PNG.

Шаг 16

Выдели нужный объект. Бери инструмент «Ласса» (> Lasso Tool), клавиша «L» и выдели на фото объект. Используй «Растушевка».

Шаг 17

Перенеси выделенное изображение на готовый новый фон при помощи клавиш «Ctrl+C» — «Ctrl+V».

Шаг 18

Меняй размер объекта при помощи комбинаций «Ctrl+T». Перемещай его по пространству фона при помощи инструмента «Перемещение» или клавиша «V». Не забудь сохранить.

Как сделать размытый фон в фотошопе?

Шаг 19

Размытие фона делается в два счета. Выделенное нужно инвертировать (правой кнопкой мыши по выделенному и в выпавшем меню жми «Инверсия выделенной области») и применить к нему фильтр «Размытие». Зайди в меню «Фильтры» — «Размытие» и примени нужный из предложенных. Размытие фона также может быть сделано при помощи инструмента «Размытие» (> Blur Tool). Так ты получил размытый фон.

Шаг 20

Чтобы получить фон градиентом – зайди на главной панели инструментов выбери инструмент «Градиент». Выбери нужный цвет и по выделенной области проведи мышкой. Градиент может быть яркий, контрастный или его можно затемнить по желанию.

Команда онлайн школы WebDesGuru прилагает все усилия для того, чтобы отойти от стандартных методов обучения, которые годами вырабатывались в системе образования. Мы ежедневно делаем шаг вперед и идём навстречу новым знаниям, которыми готовы поделиться с нашими клиентами. Оцените наши старания! Записывайтесь на курсы web-дизайна для начинающих, и учиться Вам теперь станет в удовольствие!

Влияние генетического фона на реакцию на суперовуляцию у японского черного крупного рогатого скота

J Vet Med Sci. 2019 Март; 81 (3): 373–378.

Hiroki HIRAYAMA

¹⁾ Кафедра северного биосферного сельского хозяйства, Факультет биоиндустрии, Токийский университет сельского хозяйства, Абасири, Хоккайдо 099-2493, Япония

Akira NAITO

²⁾ Центр биотехнологии животных , Исследовательская организация Хоккайдо, Синтоку, Хоккайдо 081-0038, Япония

Такаши ФУДЗИИ

²⁾ Группа биотехнологии животных, Центр исследований животных, Исследовательская организация Хоккайдо, Синтоку, Хоккайдо 081-0038, Япония

OT ^{0004 Masahito ³⁾ Отдел исследования молочного скота, Исследовательский центр молочного животноводства, Исследовательская организация Хоккайдо, Накасибецу, Хоккайдо 086-1135, Япония}

Тоширо ТАКЕДОМИ

⁴⁾ Клиника репродукции Такедоми, Обихиро, Хоккайдо, 0803-0809, Япония.

Hitomi SAKAI

¹⁾ Кафедра северного биосферного сельского хозяйства, факультет биоиндустрии, Токийский университет сельского хозяйства, Абасири, Хоккайдо 099-2493, Япония

Соичи КАГЕЯМА

^{Животное Биотехнологическая группа, Центр исследований животных, Исследовательская организация Хоккайдо, Синтоку, Хоккайдо 081-0038, Япония}

¹⁾ Департамент северного биосферного сельского хозяйства, Факультет биоиндустрии, Токийский университет сельского хозяйства, Абасири, Хоккайдо 099-2493, Япония

³⁾ Группа исследований молочного скота, Центр исследований молочного скота, Исследовательская организация Хоккайдо, Накасибецу, Хоккайдо 086-1135, Япония

⁴⁾ Takedomi Reproduction Clinic, Обихиро, Хоккайдо 080-0809, Япония

Поступило 30 октября 2018 г .; Принята в печать 26 декабря 2018 г.

Abstract

Мы исследовали влияние генетического фона на реакцию на суперовуляцию у японского черного скота. Частоты генотипов GRIA1 и FSHR относящиеся к овуляции и развитию фолликулов в каждой из основных родословных — Тадзири, Фудзиёси и Кедака — были проанализированы. Линия Тадзири имела самую низкую частоту аллеля G. гомозиготность c.710A> G в GRIA1 среди трех родословных, и было обнаружено отклонение от равновесия Харди – Вайнберга. Частоты генотипов c.337C> G, c.871A> G и c.1973C> G в FSHR находились в равновесии Харди-Вайнберга во всех родословных. Результаты обобщенного линейного анализа смешанной модели показали, что фермы, уровни концентрации анти-Мюллерова гормона (AMH) в плазме, возраста в месяцах, повторной суперовуляции, c.337C> G в FSHR и родословных оказали значительное влияние на реакцию на суперовуляция.Количество переносимых эмбрионов в группе, гетерозиготной по c.337C> G в FSHR , было значительно выше, чем в группе, гомозиготной по C аллель. Линия Kedaka показала значительно большее количество яйцеклеток / эмбрионов, оплодотворенных эмбрионов и переносимых эмбрионов, чем линии Tajiri и Fujiyoshi. Концентрация Циркулирующий АМГ является полезным эндокринным маркером для подсчета антральных фолликулов. Это исследование выявило влияние генетического фона на реакцию на суперовуляцию с использованием уровней АМГ в плазме. концентрация как ковариата.Значительное влияние генетического фона на суперовуляцию у линии Kedaka требует дополнительных исследований для подтверждения геномных регионов и полиморфизмов. которые вовлечены в эту черту.

Ключевые слова: линия крови , FSHR , GRIA1 , японский черный крупный рогатый скот, суперовуляция

Перенос эмбрионов — важный метод, который используется для улучшения генетической способности крупного рогатого скота. В последнее время ооциты, собранные из яичников на бойне или живых животных с помощью метода сбора яйцеклеток, часто использовался для получения in vitro — оплодотворенных эмбрионов; однако продуцирование in vivo -оплодотворенных эмбрионов суперовулирующими животными-донорами является тоже важно.В целом, уровень оплодотворения и устойчивость к криоконсервации у эмбрионов in vivo и выше, чем у эмбрионов in vitro и [7]. Напротив, значительная индивидуальная изменчивость реакции на суперовуляцию была ограничивающим фактором, влияющим на эффективность в vivo продуцирование эмбрионов [1].

Влияние генетического фона на чувствительность крупного рогатого скота к суперовуляции еще предстоит полностью выяснить. Сугимото и др. .[13] продемонстрировали, что однонуклеотидный полиморфизм (SNP) субъединицы 1 типа AMPA глутамат-ионотропного рецептора ( GRIA1 ) у японского черного крупного рогатого скота коррелирует с повышенным количество овуляций. Кори и др. . [2] сообщили, что SNP в рецепторе фолликулостимулирующего гормона ( FSHR ) у коров голштинской породы были связаны с реакцией на суперовуляцию; однако испытания суперовуляции немногочисленны. Недавно Parker Gaddis и др. . [9] провели крупномасштабное исследование для оценки генетических параметров, участвующих в реакции на суперовуляцию.Их исследование на коровах голштинской породы выявило несколько областей генома, связанных с суперовуляция и предположил, что с помощью этой информации можно будет выделить определенные признаки у потомства. Эффекты генов-кандидатов в этих геномных областях остаются неизвестными. быть исследованным.

Количество антральных фолликулов (AFC) в яичнике сильно различается у разных людей, а количество небольших антральных фолликулов, ответственных за экзогенное введение фолликулостимулирующих веществ. гормон (ФСГ) значительно коррелирует с количеством эмбрионов после суперовуляции [6, 11].В концентрация циркулирующего антимюллерова гормона (AMH), продуцируемого клетками гранулезы здоровых растущих фолликулов, тесно связана с AFC и полезна в качестве эндокринного маркера для яичниковые резервы крупного рогатого скота. Мы сообщали, что уровень концентрации АМГ в плазме и генотип GRIA1 оказывают синергетический эффект на реакцию на суперовуляцию, что помогает в точности предсказаний этих ответов [4]; однако различия в плазменных концентрациях АМГ в большей степени влияют на суперовуляция, чем генотип GRIA1 ; следовательно, изучение генетического фона животных при суперовуляции должно учитывать потенциальные факторы в ответах, такие как AFC и уровни концентрации AMH в плазме.

Японский черный крупный рогатый скот происходит от аборигенного азиатского крупного рогатого скота и специально отобран для производства плотной мраморной говядины. У японского черного рогатого скота есть три основных родословных — Тадзири, Фудзиёси и Кедака, которые произошли из районов региональной географической изоляции в Японии. Кровные линии имеют характерные генетические черты качества мяса, скорости роста, типа скелета и материнской породы. способность. Кроме того, хотя опыт показывает, что эффективность продуцирования эмбрионов в ответ на суперовуляцию варьируется в зависимости от родословной, любые подробные исследования конкретных характеристик об их реакции на суперовуляцию этих кровных линий не сообщается.

В этом исследовании мы исследовали влияние генотипа GRIA1 , генотипов FSHR и родословных на чувствительность к суперовуляции у японских чернокожих. крупный рогатый скот с использованием обобщенной линейной смешанной модели (GLMM) с уровнями концентрации АМГ в плазме в качестве коварианты.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Все процедуры экспериментов на животных проводились в соответствии с руководящими принципами и этическими нормами, утвержденными Комитетом по экспериментам на животных Центра исследований животных.

Суперовуляция и сбор эмбрионов

С 2010 по 2013 год в Центре исследований животных (ферма A) и с 2007 по 2013 год на коммерческой ферме (ферма B), расположенной в восточной части префектуры Хоккайдо, Япония, суперовуляция была индуцирована у японского черного рогатого скота, и эмбрионы были собраны. У животных индуцировали суперовуляцию с помощью ФСГ (20 МЕ / корову, Antrin R-10, Kyoritsu Seiyaku Corp., Токио, Япония) вводили два раза в день в уменьшающихся дозах в течение 3 дней.Инъекция простагландина F2α (клопростенол 0,5 или 0,75 мг / корову, Resipron-C, ASKA Animal Health Co., Ltd., Токио, Япония) вводили на третий день лечения суперовуляции. Устройство с контролируемым внутренним высвобождением лекарственного средства (CIDR) (Eazi-Breed, Pfizer Japan Inc., Токио, Япония) было вставлено в коровам за 7–10 дней до введения простагландина F2α. Инъекция 1 мг коровьего эстрадиола бензоата (Kyoritsu Seiyaku Corp.) была сделана за 4 дня до начала ФСГ. инъекции в хозяйстве А.Инъекция 2 мг коровьего бензоата эстрадиола вводилась за 5 дней до начала инъекции ФСГ на ферме B. Коров-доноров осеменяли через 12 и 24 часа. после обнаружения течки путем визуального наблюдения, и эмбрионы были извлечены через 7-8 дней после осеменения. Специалисты каждой фермы с высокой квалификацией собирали эмбрионы, которые затем были классифицированы в соответствии с критериями, установленными Международным обществом технологии эмбрионов [14]. Для этого исследования эмбрионы с кодом 1 и 2 были определяется как переносимые эмбрионы.

Генотипирование GRIA1 и FSHR

ДНК экстрагировали из образцов венозной крови с помощью набора DNeasy Blood and Tissue Kit (QIAGEN GmbH, Hilden, Германия). Перечислены праймеры для полимеразной цепной реакции (ПЦР) и рестрикционные ферменты. в . Генетический полиморфизм GRIA1 был определен согласно Sugimoto et al . [13]. Прямая ДНК секвенирование продуктов ПЦР или анализ полиморфизма длин рестрикционных фрагментов ПЦР (ПЦР-ПДРФ) проводили для определения генотипа c.710A> G. Генетический полиморфизм FSHR определяли согласно Cory et al . [2]. ПЦР-ПДРФ анализ проводился для определения полиморфизма c.337C> G, c.871A> G и c.1973C> G.

Таблица 1.

Последовательности праймеров и рестрикционные ферменты для ПЦР-ПДРФ

[рестрикционные фрагменты]77777777777 G c871A> G

Ген	SNP	Праймер	Рестрикционный фермент	ПЦР-продукты (п.н.)
GRIA1	с.710A> G	AGCCTCCCTACCAGCTCTCT	BfuAI	241
		CGTTGTTGCCAGCCTCAC
GGACAAAGGGTGAATAACTG	HgaI	286
		CCACATCTTTGATTACAA		[150, 136]	c
	AGGGCAGACAGACTGTTAGA ферментом BsrI	409
			GTGATGGCCAGGATGCTAAT	[265, 144]
	c.1973C> G		CATCTTCACCAAGAACTTCC MnlI	329
		TGCCAGGGAGATTAAATTAG		[226, 103]

Концентрация AMH в плазме

Образцы крови Венеры, подвергнутые герифугаринованию, были собраны при 3000 ° C и 4 000 × центрированных проб 10 ° C при 3000 ° C и 4 000 × центрифугированных проб при температуре 3000 ° C восстановить плазму, которая хранилась при -20 ° C до проведения анализов AMH.На ферме A кровь собирали перед каждой суперовуляцией, а интервал между сбором крови и сбором эмбрионов составлял 38 ± 66 дней (среднее ± стандартное отклонение). На ферме B кровь была собраны со всех животных только один раз в марте 2013 г .; следовательно, интервал между сбором крови и сбором эмбрионов составлял -275 ± 432 дня. Концентрации АМГ измеряли, как раньше. сообщили об использовании набора для ELISA AMH Gen II (Beckman Coulter, Brea, CA, USA). Для анализа использовали неразбавленную плазму (20 мкл ) [4].

Статистический анализ

GLMM использовался для анализа влияния фермы, уровней концентрации АМГ в плазме, возраста в месяцах, повторной суперовуляции, генетических полиморфизмов в GRIA1 и FSHR и крови донорских животных по реакции на суперовуляцию. Мы рассматривали отдельных животных как случайные эффекты. Распределение вероятности признака значения были приняты как распределение Пуассона, а натуральный логарифм использовался как функция связи.Родословная животных-доноров была определена как родословная отца и была разделена на три основные группы — Тадзири, Фудзиёси и Кедака — японского черного рогатого скота на основе определения, предоставленного Японской ассоциацией улучшения животноводства, Inc. Шигекане и Эйко были сгруппированы в линии Тадзири и Кедака, соответственно, которые были наиболее близки к ним по линии преемственности. Количество животных-доноров относится к Тадзири, Фудзиёси и Линии Kedaka были 11 (27%), 5 (12%) и 25 (61%) в хозяйстве A и 40 (39%), 22 (22%) и 40 (39%) в хозяйстве B.Количество животных и основная статистическая информация об исходе суперовуляция (например, количество эмбрионов и уровни АМГ) представлены в. Некоторые из этих данных были использованы в предыдущем исследовании, в котором изучалась корреляция между уровнями концентрации АМГ в плазме и реакцией на суперовуляцию. [5]. Влияние независимой переменной на количество яйцеклеток / эмбрионов (NOE), оплодотворенных эмбрионов (NFE) и переносимых эмбрионов (NTE) было оценивали с помощью теста Вальда типа II χ ².Средние наименьшие квадраты NOE, NFE и NTE были рассчитаны с использованием моделей. Эффекты генетического полиморфизма в GRIA1 , FSHR, и родословные по NOE, NFE и NTE оценивали с использованием теста множественного сравнения Тьюки. Отклонение от равновесия Харди – Вайнберга составило протестировано с помощью теста χ ². Экспериментальные данные были проанализированы с помощью статистической программы R, реализующей пакеты lme4 и lsmeans.

Таблица 2.

Основные статистические данные по суперовуляции

Ферма	Животные	Всего SOV	Возраст в месяцах на SOV	Повтор SOV №	яйцеклеток / эмбрионов	Кол-во оплодотворенных эмбрионов	Кол-во подлежащих передаче эмбрионов	AMH ( n г / м л )
A	41	41	41	92 ± 39	4,0 ± 3,5	12,3 ± 10,4	10,0 ± 9,5	5,9 ± 6,1	0,274 ± 0,297
B	102	835		50 ± 164	22.6 ± 12,6	17,6 ± 11,0	12,6 ± 8,2	0,465 ± 0,382

Всего	143	997	56 ± 26
16,3 ± 11,2	11,5 ± 8,3	0,434 ± 0,376

РЕЗУЛЬТАТЫ

Донорские японские черные коровы имели самую низкую частоту гомозиготности по аллелю A c.710A> G в GRIA1 ().Другая частота генотипов в SNP наблюдалась в родословной линии Тадзири по сравнению с таковой в линиях Фудзиёси и Кедака. Линия Тадзири имела самую низкую частоту гомозиготность по аллелю G среди трех линий крови, и было обнаружено отклонение от равновесия Харди-Вайнберга.

Таблица 3.

Частота генотипов в основных родословных донора японского черного крупного рогатого скота

9018 G0184 9017 0,018 G184 0,0179

Ген	Генотип и HWE	Родословная			Всего (n = 143)	Fujiyoshi	Kedaka
		(n = 51)	(n = 27)	(n = 65)
		GRIA1	AA	0.157		0,111	0,031	0,091
c.710A> G	AG	0,686	0,370	0,415	0,503
0,503	0,406
	HWE	P = 0,0078	нс	н.у.	н.у.

FSHR	CC	0.627	0,296	0,600	0,552
c.337C> G	CG	0,353	0,630	0,385	0,420
0,018 G184 9017			0,028
	HWE	нс	н.у.	н.у.	н.у.

FSHR	AA	0.078	0,111	0,215	0,147
c.871A> G	AG	0,549	0,481	0,615	0,566
	0,566
	G184	0,287
	HWE	нс	н.у.	н.у.	н.у.

FSHR	CC	0.431	0,444	0,185	0,322
c.1973C> G	CG	0,510	0,481	0,600	0,545
0,133
	HWE	нс	н.у.	н.у.	н.у.

В полиморфизмах FSHR частота гомозиготности по аллелю G в c.337C> G был самым низким независимо от родословной. Самая высокая частота гомозиготности по C Аллель наблюдался у линий Тадзири и Кедака, тогда как гетерозиготность была самой высокой в линии Фудзиёси. Частоты гетерозиготности для c.871A> G и c.1973C> G были высокими в все родословные. Частоты генотипов этих SNP в FSHR демонстрируют равновесие Харди – Вайнберга.

Среднее ± стандартное отклонение концентрации АМГ в плазме ( n г / м l ) в линиях Тадзири, Фудзиёси и Кедака составляло 0.359 ± 0,319, 0,302 ± 0,205 и 0,341 ± 0,340 соответственно. Не было значительных различий в концентрациях АМГ в плазме крови между родословными.

Факторы окружающей среды, которые могут повлиять на суперовуляторную реакцию, были включены в GLMM как ковариаты (). Результаты теста Вальда типа II χ ² показали, что ферма, концентрация АМГ и повторная суперовуляция имели значительные эффекты ( P <0,001) в GLMM по NOE, NFE и NTE. Возраст в месяцах оказал значительное влияние на GLMM на NOE ( P <0.001), NFE ( P <0,001) и NTE ( P <0,01).

Таблица 4.

Влияние факторов окружающей среды в обобщенных линейных смешанных моделях суперовуляторной реакции

614

Ковариат	Число яйцеклеток / эмбрионов		Число оплодотворенных эмбрионов		Число переносимых эмбрионы
Ковариат	Оценка	P значение	Оценка	P значение	Оценка	P значение
Ферма 1
<0,001	1,674	<0,001	1,581	<0,001
Концентрация АМГ в плазме	0,732	<0,001	0,592 0,0060	Возраст в месяцах	1,227	<0,001	1,282	<0,001	0,755	<0,01
Повторение суперовуляции	−0.042	<0,001	-0,041	<0,001	-0,030	<0,001

Средние квадраты NOE, NFE и NTE были оценены с использованием GLMMs в соответствии с каждым генотипом (родословной). Значимых эффектов генетических полиморфизмов в GRIA1 не обнаружено. Существенные эффекты на NTE были обнаружены только у C.337C> G из ФШР . NTE у гетерозиготных по c.337C> G крупного рогатого скота были значительно выше, чем у гомозиготных по C-аллелю.NOE, NFE и NTE в родословной Кедака были значительно выше, чем у линий Тадзири и Фудзиёси.

Таблица 5.

Средние наименьших квадратов суперовуляторного ответа, оцененные с использованием обобщенных линейных смешанных моделей

0,14 0184 1,942 1,125 ± 0,16 CC18 2 CC14 ± 0,12 КГ Таджири 2,3 a) 0,20 ^{A, a)}

Генотип и родословная		n	Наименьшее квадратичное среднее ± стандартная ошибка
Генотип и родословная		n	Кол-во яйцеклеток / эмбрионы	Количество оплодотворенных эмбрионов	Количество переносимых эмбрионов
GRIA1 c.710A> G	AA	87	2,26 ± 0,23	1,80 ± 0,29	1,35 ± 0,25
	AG	490	2,25 ± 0,16	490	2,25 ± 0,16
	GG	420	2,43 ± 0,16	2,06 ± 0,19	1,60 ± 0,17

FSHR c.337179	1,74 ± 0,15	1,41 ± 0,13 ^б)
	CG	490	2,35 ± 0,13	2,05 ± 0,16	1,74 ± 0,14 9	GG	17	2,45 ± 0,36	1,91 ± 0,44	1,22 ± 0,40

FSHR c.871A> G	AA 142 2,79				.14 ± 0,43	1,84 ± 0,38
	AG	555	2,16 ± 0,26	1,63 ± 0,31	1,17 ± 0,28
			GG 1,93 ± 0,39	1,37 ± 0,35

FSHR c.1973C> G	CC	321	2,04 ± 0,31	1,64 ± 0,38			545	2.46 ± 0,23	2,19 ± 0,28	1,69 ± 0,25
	GG	131	2,44 ± 0,39	1,88 ± 0,48	1,25 ± 0,42
			335	2,32 ± 0,17 ^б)	1,86 ± 0,21 ^б)	1,40 ± 0,19 ^б)
	Fujiyoshi 162			97 ± 0,20 ^B)	1,55 ± 0,25 ^B)	1,16 ± 0,22 ^B)
	Kedaka	500	2,65 ± 0,1684	1,81 ± 0,18 ^{A, a)}

ОБСУЖДЕНИЕ

Японский черный — самая популярная порода вагю, которую разводят в каждом регионе Японии в течение многих лет. Родословная Тадзири происходит от отца, родившегося в префектуре Хёго и его выдающаяся генетика позволяет производить говядину с мраморным вкусом.Родословные Кедака и Фудзиёси образовались в префектурах Тоттори и Симанэ соответственно. Эти закрытые разведения не только способствовал улучшению стандартного числа мраморности говядины, но также привел к определенным характеристикам внутри линий, таким как скорость роста, размер корпуса и темперамент; следовательно, Сравнение кровных линий может дать ценную информацию о наследственных факторах, ответственных за репродуктивные особенности. В настоящем исследовании мы исследовали эффекты генетический фон реакции на суперовуляцию у японского черного крупного рогатого скота.

Сначала мы проанализировали частоты генотипов генов, связанных с овуляцией и ростом фолликулов. Частота генотипа c.710A> G в GRIA1 была аналогична таковой в Отчет о донорских японских черных коровах Сугимото и др. . [13], в которых гомозиготность по аллелю A c.710A> G, соответствующему аспарагин по аминокислотному остатку 306 имел самый низкий ответ на обработку суперовуляции и частоту генотипа. Мы проанализировали частоту генотипов в родословных и отклонения от Равновесие Харди – Вайнберга наблюдалось только в линии Тадзири.Частота генотипов в линии Тадзири гетерозиготности по c.710A> G была самой высокой среди трех линий крови, а Генотипическая частота гомозиготности по аллелю G была наименьшей. Кори и др. . [2] сравнили частоты генотипов трех SNP — c.337C> G, c.871A> G и c.1973C> G — в FSHR среди коров голштинской, джерсейской, ангусской и шароле. Настоящие результаты показывают, что частоты генотипов трех SNP FSHR у японских черных коров были аналогичны таковым у коров голштинской породы.Никаких отклонений от равновесия Харди – Вайнберга не наблюдалось ни в каких SNP или родословных. Эти результаты предполагают, что генетический отбор в процессе создания линии Tajiri повлиял на частоту генотипа полиморфизма GRIA1 . Линия Tajiri производит мелкие мраморная говядина и в целом демонстрирует меньшие размеры, меньшую массу тела при рождении и более низкую скорость роста, чем у представителей других линий; следовательно, разведение, ориентированное на мраморность, могло иметь неблагоприятные эффекты на склонность к суперовуляции.

Многие факторы, такие как порода, возраст, питание и другие управленческие факторы, влияют на реакцию яичников [3, 8]. В этом В ходе исследования было обнаружено значительное влияние на суперовуляторный ответ на ферме, уровни концентрации АМГ в плазме, возраст в месяцах и повторную суперовуляцию. Разница между результатами из двух хозяйств можно объяснить различиями в условиях ведения хозяйства. В соответствии с предыдущими исследованиями, уровни концентрации АМГ в плазме положительно коррелировали с эмбриональной эффективность производства [5, 10, 12].Ранее мы сообщали, что уровни Концентрация АМГ в плазме крови доноров постепенно снижалась при повторной суперовуляции [5]. Хотя эти уровни у коров с фермы B могут быть неточными. поскольку кровь собирали только один раз, а интервалы между извлечением эмбриона и сбором крови сильно различались у отдельных коров, была обнаружена очевидная корреляция между уровнями концентрация АМГ в плазме и реакция на суперовуляцию. На суперовуляторную реакцию положительно влиял возраст в месяцах.Длительное использование доноров, лучше реагирующих на суперовуляцию может вызвать положительный эффект. Хотя предыдущие исследования предполагают, что продукция эмбрионов не снижается, когда суперовуляция у доноров повторно индуцируется прогестином и простагландином. F2α [3, 8], среди практикующих общепризнано снижение чувствительности к повторной суперовуляции. В этом В исследовании, указанные выше четыре фактора окружающей среды были включены в GLMM в качестве ковариант для оценки воздействия генетических факторов.

Средние арифметические значения NOE в соответствии с п.710A> G генотип GRIA1 составлял 19,3, 19,7 и 22,8 у гомозиготных по аллелю А (n = 87), гетерозиготных (n = 490) и гомозиготные по аллелю G (n = 420), соответственно, и самые высокие NOE наблюдались у гомозиготных по аллелю G, как наблюдалось в предыдущих исследованиях [4, 13]; однако статистически значимого эффекта генотипа GRIA1 с использованием анализа GLMM не наблюдалось. Различия статистических результатов может быть связано с использованием анализа GLMM с учетом факторов окружающей среды.Значительный эффект генетического полиморфизма обнаружен только у c.337C> G ФШР . Хотя гомозиготность по аллелю G c.337C> G реже (17 из 997 суперовуляции) использовалась для оценки влияния на суперовуляцию, NTE в тех Гетерозиготность по SNP была значительно выше, чем у гомозиготных по аллелю C. Кори и др. . [2] сообщили, что процент Количество жизнеспособных эмбрионов у гомозиготных по аллелю G в c.337C> G было значительно выше, чем у гомозиготных по аллелю C, но было только два животных, гомозиготных по G аллель.Настоящее исследование предполагает, что аллель G c.337C> G может положительно влиять на жизнеспособность эмбрионов, образованных в результате суперовуляции. Необходимо дальнейшее расследование, чтобы выяснить влияние SNP на передачу сигналов ФСГ в клетках гранулезы.

Различия в эффективности производства эмбрионов среди кровных линий японского черного крупного рогатого скота были эмпирически признаны. Впервые мы проанализировали влияние родословных на к уровням концентрации АМГ в плазме, которые сильно различались у разных людей и имели сильную связь с реакцией на суперовуляцию.Линия Кедака показала значительно более высокая эффективность производства эмбрионов, чем у линий Fujiyoshi и Tajiri. Чувствительность к суперовуляции является количественным признаком, и недавнее исследование с использованием общегеномных ассоциаций анализ показал, что некоторые участки генома в BTA5, BTA8, BTA13, BTA14 и BTA21 вовлечены в этот признак [9]; следовательно, генетические полиморфизмы в GRIA1 и FSHR , которые расположены на BTA7 и BTA11, соответственно, могут иметь второстепенную функцию в суперовуляции.Выдающийся эффект генетического фона в линии Kedaka суперовуляция представляет интерес и требует дальнейших исследований для подтверждения ассоциации с кандидатными областями генома, предложенными Parker Gaddis et al . [9].

Таким образом, GLMM-анализ ответов на суперовуляцию у японского черного крупного рогатого скота позволяет предположить, что c.337C> G в FSHR оказал значительное влияние на NTE. Отчетливые различия в этом ответе были обнаружены три линии крови. Линия Kedaka показала значительно более высокую эффективность производства эмбрионов, чем линии Tajiri и Fujiyoshi.Эти данные предоставляют важная информация для повышения эффективности производства эмбрионов in vivo путем генетической селекции.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Бо Г. А., Маплетофт Р. Дж., 2014. Исторические перспективы и недавние исследования суперовуляции крупного рогатого скота. Териогенология 81: 38–48. DOI: 10.1016 / j.theriogenology.2013.09.020 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 2. Кори А. Т., Прайс К. А., Лефевр Р., Пэйлин М. Ф. 2013. Идентификация однонуклеотидных полиморфизмов в рецепторе фолликулостимулирующего гормона крупного рогатого скота и влияние генотипов на признаки суперовуляторной реакции. Anim. Genet. 44: 197–201. doi: 10.1111 / j.1365-2052.2012.02380.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 3. Хаслер Дж. Ф., 2014. Сорок лет переноса эмбрионов крупного рогатого скота: обзор журнала Theriogenology, рост отрасли в Северной Америке и личные воспоминания. Териогенология 81: 152–169. DOI: 10.1016 / j.theriogenology.2013.09.010 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 4. Хираяма Х., Кагеяма С., Наито А., Фукуда С., Фуджи Т., Минамихаши А. 2012. Прогнозирование суперовуляторного ответа у японского черного крупного рогатого скота с использованием ультразвука, концентрации антимюллерова гормона в плазме и полиморфизм в ионотропном рецепторе глутамата AMPA1 / GRIA1. J. Reprod. Dev. 58: 380–383. doi: 10.1262 / jrd.11-129S [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 5. Хираяма Х., Наито А., Фукуда С., Фуджи Т., Асада М., Инаба Ю., Такедоми Т., Кавамата М., Мориясу С., Кагеяма С. 2017. Долгосрочные изменения концентрации антимюллерова гормона в плазме и взаимосвязь с суперовуляторной реакцией у чернокожих японцев крупный рогатый скот. J. Reprod. Dev. 63: 95–100. doi: 10.1262 / jrd.2016-019 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 6. Кавамата М.1994. Взаимосвязь между количеством мелких фолликулов до суперовуляторного лечения и суперовуляторной реакцией у голштинской породы. коровы. J. Vet. Med. Sci. 56: 965–967. doi: 10.1292 / jvms.56.965 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 7. Лонерган П., Ярмарка Т.2008. Эмбрионы крупного рогатого скота, полученные in vitro: борьба с бородавками. Териогенология 69: 17–22. DOI: 10.1016 / j.theriogenology.2007.09.007 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 8. Маплетофт Р. Дж., Стюард К. Б., Адамс Г. П., 2002. Последние достижения в области суперовуляции крупного рогатого скота. Репродукция. Nutr. Dev. 42: 601–611. doi: 10.1051 / rnd: 2002046 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 9. Паркер Гэддис К. Л., Дикмен С., Налл Д. Дж., Коул Дж. Б., Хансен П. Дж. 2017. Оценка генетических компонентов признаков, связанных с суперовуляцией, экстракорпоральным оплодотворением и переносом эмбрионов у голштинской породы крупный рогатый скот. J. Dairy Sci. 100: 2877–2891. doi: 10.3168 / jds.2016-11907 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 10. Rico C., Drouilhet L., Salvetti P., Dalbiès-Tran R., Jarrier P., Touzé J.L., Pillet E., Ponsart C., Fabre S., Monniaux D, 2012. Определение концентраций антимюллерова гормона в крови как инструмент отбора коров-доноров голштинской породы для производства эмбрионов: от лаборатория в колхоз. Репродукция. Fertil. Dev. 24: 932–944. doi: 10.1071 / RD11290 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 11. Сингх Дж., Домингес М., Джайсвал Р., Адамс Г. П., 2004. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования гиперстимулирующей реакции у крупного рогатого скота. Териогенология 62: 227–243. DOI: 10.1016 / j.theriogenology.2003.09.020 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Соуза А. Х., Карвалью П. Д., Рознер А. Э., Виейра Л. М., Хакбарт К. С., Бендер Р. В., Дреш А. Р., Верстеген Дж. П., Шейвер Р. Д., Уилтбанк М. С. 2015. Связь между циркулирующим антимюллеровым гормоном (АМГ) и суперовуляторной реакцией высокопродуктивных молочных коров. J. Dairy Sci. 98: 169–178. doi: 10.3168 / jds.2014-8182 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 13. Сугимото М., Сасаки С., Ватанабэ Т., Нисимура С., Идета А., Ямазаки М., Мацуда К., Юдзаки М., Сакимура К., Аояги Ю., Сугимото Ю. 2010. Ионотропный рецептор глутамата AMPA 1 связан со скоростью овуляции. PLoS Один 5: e13817. doi: 10.1371 / journal.pone.0013817 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Райт Дж. М. 2010. Руководство Международного общества по переносу эмбрионов, 4-е изд., Международное общество по переносу эмбрионов, Шампейн. [Google Scholar]

Фолликулостимулирующий гормон (ФСГ) | Лабораторные тесты онлайн

Источники, использованные в текущем обзоре

Джаббур, С.(12 марта 2018 г., обновлено). Нарушения фолликулостимулирующих гормонов. Медицинская эндокринология. Доступно в Интернете по адресу https://emedicine.medscape.com/article/118810-overview#showall. Доступ 5.05.19.

Софронеску, А. и Уилер, Т. (16 июля 2015 г., обновлено). Фолликулостимулирующий гормон (ФСГ). Медицинская лаборатория медицины. Доступно в Интернете по адресу https://emedicine.medscape.com/article/2089048-overview#showall. Доступ 5.05.19.

(© 1995–2019). Фолликулостимулирующий гормон, сыворотка.Клиника Мэйо Медицинские лаборатории Мэйо. Доступно на сайте https://www.mayomedicallaboratories.com/test-catalog/Clinical+and+Interpretive/602753. Доступ 5.05.19.

Bayrak-Toydemir, P. et. al. (Июль 2017 г., обновлено). Бесплодие. ARUP Consult. Доступно в Интернете по адресу https://arupconsult.com/content/infertility. Доступ 5.05.19.

Коренблюм, Б. и Мулинда, Дж. (19 июня 2018 г., обновлено). Гипопитуитаризм (Panhypopituitarism). Медицинская эндокринология. Доступно на сайте https: // emedicine.medscape.com/article/122287-overview. Доступ 5.05.19.

Genzen, J. et. al. (Март 2018 г., обновлено). Аменорея. ARUP Consult. Доступно на сайте https://arupconsult.com/content/amenorrhea?_ga=2.71540243.1479446145.1525530915-171446445.1522145782. Доступ 5.05.19.

Источники, использованные в предыдущих обзорах

Корбетт, СП. Лабораторные тесты и диагностические процедуры с медсестринскими диагнозами, 4-е изд. Стэмфорд, штат Коннектикут: Appleton & Lang, 1996. С. 429-431, 726.

Клиническое руководство по лабораторным исследованиям. 3-е изд. Тиц Н, изд. Филадельфия: W.B. Saunders & Co; 1995: 248-249, 210-211.

Международный совет по распространению информации о бесплодии, СПКЯ в педиатрии: когда и как это начинается? Первоначально написано и представлено Сильвой Арсланян, доктором медицины, Детская больница Питтсбурга, Питтсбург, Пенсильвания; резюмировано в онлайн-версии Кристин М. Шредер, PhD. Доступно в Интернете по адресу http://www.inciid.org/pcos/PCOS-pediatrics.html.

Гонадотропины: лютеинизирующие и фолликулостимулирующие гормоны. Доступно в Интернете по адресу http://arbl.cvmbs.colostate.edu/hbooks/pathphys/endocrine/hypopit/lhfsh.html.

Блонделл Р.Д., Фостер М.Б., Камлеш CD. Расстройства полового созревания. Американский семейный врач, июль 1999 г. (онлайн-публикация). Доступно в Интернете по адресу http://www.aafp.org/afp/9ap/209.html.

Гормональное общество. Информационный бюллетень по женскому бесплодию. Доступно в Интернете по адресу http://www.endo-society.org/pubrelations/patientInfo/infertility.htm.

Гормональный фонд. Информационный бюллетень о синдроме поликистозных яичников (СПКЯ). Доступно в Интернете по адресу http://www.hormone.org/pcos_factsheet.html.

Лоуренс М. Демерс, доктор философии. Заслуженный профессор патологии и медицины Медицинского колледжа Государственного университета Пенсильвании, Медицинский центр М.С. Херши, Херши, Пенсильвания.

Руководство по лабораторным и диагностическим исследованиям. 6-е изд. Fischbach F, ed. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс; 2000.

Пагана К., Пагана Т.Руководство Мосби по диагностическим и лабораторным исследованиям. Сент-Луис: Мосби; 1998.

Дэвис Б., Массачусетс Д., Бишоп М. Принципы использования клинических лабораторий и консультаций. Сондерс; 1999.

Томпасон, Шарон. ЛГ ответ на гонадолиберин. (Обновлено в августе 2005 г.) MedlinePlus (онлайн-информация). Доступно по адресу http://www.nlm.nih.gov/medlineplus/print/ency/article/003709.htm.

Нили Е.К., Уилсон Д.М., Ли П.А., Стене М., Хинц Р.Л. (июль 1995 г.). Спонтанная концентрация гонадотропина в сыворотке при оценке преждевременного полового созревания. J Pediatric 127 (1): 47-52 из PubMed. Доступно в Интернете по адресу http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?cmd=Retrieve&db=PubMed&dopt=Abstract&list_uids=7608810.

Nirupama Kakarla, M.D .; Карен Д. Брэдшоу, доктор медицины (Опубликовано 03/05/2004). Расстройства полового созревания: преждевременное половое созревание. Из Семинары по репродуктивной медицине 21 (4): 339-351 от Medscape. Доступно в Интернете по адресу http://www.medscape.com/viewarticle/468259.

Brito VN, Batista MC, Borges MF, Latronico AC, Kohek MB, Thirone AC, Jorge BH, Arnhold IJ, Mendonca BB.(Октябрь 1999 г.) Диагностическая ценность флуорометрических тестов в оценке преждевременного полового созревания. Дж Клин Эндокринол Метаб . 84 (10): 3539-44. Доступно в Интернете по адресу http://www.ncbi.nlm.nih.gov.

Sheehan, M (декабрь 2003 г.). Синдром поликистозных яичников: диагностика и лечение. Клиническая медицина и исследования , 2 (1): 13-27. Доступно в Интернете по адресу http://www.pubmedcentral.gov/articlerender.fcgi?artid+1069067.

Storck, S. (Обновлено 2 сентября 2009 г.). ФСГ. Медицинская энциклопедия MedlinePlus [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://www.nlm.nih.gov/medlineplus/ency/article/003710.htm. По состоянию на февраль 2010 г.

Джаббур, С. (Обновлено 15 июня 2009 г.). Нарушения фолликулостимулирующих гормонов. eMedicine [Он-лайн информация].Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/118810-overview. По состоянию на февраль 2010 г.

Meikle, A. W. et. al. (Обновлено в ноябре 2009 г.). Аменорея. ARUP Consult [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://www.arupconsult.com/Topics/Amenorrhea.html#. По состоянию на февраль 2010 г.

Brzyski, R. и Jensen, J. (отредактировано в марте 2007 г.) Женская репродуктивная эндокринология, Введение. Пособие Merck для специалистов здравоохранения [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http: // www.merck.com/mmpe/sec18/ch343/ch343a.html?qt=FSH&alt=sh. По состоянию на февраль 2010 г.

MayoClinic.com: Менопауза. Доступно в Интернете по адресу http://www.mayoclinic.com/health/menopause/DS00119. По состоянию на февраль 2010 г.

Национальный институт старения: менопауза. Доступно в Интернете по адресу http://www.nia.nih.gov/HealthInformation/Publications/menopause.htm. По состоянию на февраль 2010 г.

MedlinePlus Health Topics: Женская репродуктивная система. Доступно в Интернете по адресу http://www.nlm.nih.gov/medlineplus/femalereproductivesystem.html. По состоянию на февраль 2010 г.

Helzisouer KJ, Alberg AJ, Gordon GB, et al. Гонадотропины и стероидные гормоны в сыворотке крови и развитие рака яичников. JAMA 274 (24): 1926-1930, 1995.

Backer LC, Rubin CS, Kieszak SM, et al. Фолликулостимулирующий гормон сыворотки и национальное обследование здоровья и питания (NANES III, 1988–1994). Менопауза 6 (1): 29-35, 1999.

Lin, J. (Обновлено 16 февраля 2012 г.). Фолликулостимулирующий гормон (ФСГ). Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/2089048-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Джаббур, С. (Обновлено 3 января 2012 г.). Нарушения фолликулостимулирующих гормонов. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/118810-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Кони, П. (Обновлено 7 апреля 2014 г.). Менопауза. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу [Информация в Интернете]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/264088-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Meikle, A. и Straseski, J. (обновлено в ноябре 2013 г.). Бесплодие. ARUP Consult [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://www.arupconsult.com/Topics/Infertility.html?client_ID=LTD#tabs=0. По состоянию на апрель 2014 г.

Беляк, К., Попат, В.(Обновлено 5 июня 2012 г.). Аменорея. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/252928-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Эрнандес-Рей, А. (обновлено 2 декабря 2013 г.). Ановуляция. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу [Информация в Интернете]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/253190-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

(© 1995–2014). ФСГ. Клиника Мэйо Медицинские лаборатории Мэйо [Он-лайн информация].Доступно в Интернете по адресу http://www.mayomedicallaboratories.com/test-catalog/Overview/8670. По состоянию на апрель 2014 г.

(обновлено 9 сентября 2013 г.) Управление редких заболеваний Национального института здравоохранения США.Синдром Клайнфельтера. Доступно в Интернете по адресу http://rarediseases.info.nih.gov/gard/8705/klinefelter-syndrome/resources/9. По состоянию на апрель 2014 г.

(Обновлено 18 июня 2012 г.) Управление редких заболеваний Национального института здравоохранения. Синдром Тернера. Доступно в Интернете по адресу http://rarediseases.info.nih.gov/gard/7831/turner-syndrome/resources/1. По состоянию на апрель 2014 г.

Sinha, S. (Обновлено 14 августа 2013 г.). Преждевременное псевдопубертатное созревание. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно на сайте http: // emedicine.medscape.com/article/6-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Kaplowitz, P. (Обновлено 11 февраля 2013 г.). Преждевременное половое созревание. Справочник по Medscape [Он-лайн информация]. Доступно в Интернете по адресу http://emedicine.medscape.com/article/

2-overview. По состоянию на апрель 2014 г.

Возрастные изменения уровней антимюллерова гормона у ливанских женщин: корреляция с базовыми уровнями ФСГ и ЛГ и соотношением ЛГ / ФСГ: кросс-секционное исследование | BMC Women’s Health

1.
Cate RL, Mattaliano RJ, Hession C, Tizard R, Farber NM, Cheung A, et al.Выделение бычьих и человеческих генов на вещество, ингибирующее Мюллериан, и экспрессию человеческого гена в клетках животных. Клетка. 1986; 45: 685–98.
CAS Статья Google Scholar

2.
Josso N. ЖЕНЩИНЫ В РЕПРОДУКТИВНОЙ НАУКЕ: Антимюллеров гормон: взгляд назад и вперед. Репродукция. 2019; 158: F81–9.
CAS Статья Google Scholar

3.
Rey R, Lukas-Croisier C, Lasala C, Bedecarrás P.AMH / MIS: что мы уже знаем о гене, белке и его регуляции. Mol Cell Endocrinol. 2003; 211: 21–31.
CAS Статья Google Scholar

4.
Куири-Ханнинен Т., Каллио С., Сеури Р., Тюрвяйнен Э, Лиакка А., Тапанайнен Дж. Постнатальные изменения в гипофизарно-яичниковой оси у недоношенных и доношенных девочек. J Clin Endocrinol Metab. 2011; 96: 3432–9.
Артикул Google Scholar

5.
Josso N, di Clemente N, Gouédard L. Антимюллеров гормон и его рецепторы. Mol Cell Endocrinol. 2001. 179 (1–2): 25–32.
CAS Статья Google Scholar

6.
Mullen RD, Wang Y, Liu B, Moore EL, Behringer RR. Osterix функционирует ниже по ходу передачи сигналов антимюллерова гормона, регулируя регрессию мюллерова протока. Proc Natl Acad Sci U S. A. 2018; 115: 8382–7.
Артикул Google Scholar

7.
Шин Си, Ли Дж. Р., Но Г. В., Ким Х. Дж., Кан У. Дж., Ким Ш., Чанг Дж. К.. Анализ сывороточных уровней антимюллерова гормона, ингибина B, инсулиноподобного фактора роста-I, белка-3, связывающего инсулиноподобный фактор роста, и фолликулостимулирующего гормона в зависимости от возраста и статуса менопаузы. J Korean Med Sci. 2008; 23: 104–10.
CAS Статья Google Scholar

8.
Лентон Э.А., Секстон Л., Ли С., Кук ИД. Прогрессивные изменения в соотношении ЛГ и ФСГ и ЛГ: ФСГ у женщин на протяжении репродуктивной жизни.Maturitas. 1988. 10 (1): 35–43.
CAS Статья Google Scholar

9.
Visser JA, de Jong FH, Laven JS, Themmen AP. Антимюллеров гормон: новый маркер функции яичников. Репродукция. 2006; 131: 1–9.
CAS Статья Google Scholar

10.
Hehenkamp WJ, Looman CW, Themmen AP, de Jong FH, Te Velde ER, Broekmans FJ. Уровни антимюллерова гормона в спонтанном менструальном цикле не подвержены значительным колебаниям.J Clin Endocrinol Metab. 2006. 91: 4057–63.
CAS Статья Google Scholar

11.
Streuli I, Fraisse T, Pillet C, Ibecheole V, Bischof P, de Ziegler D. Уровни антимюллерова гормона в сыворотке остаются стабильными на протяжении всего менструального цикла и после перорального или вагинального введения синтетических половых стероидов. Fertil Steril. 2008; 90: 395–400.
CAS Статья Google Scholar

12.
Нардо Л.Г., Гелбая Т.А., Уилкинсон Х., Робертс С.А., Йейтс А., Пембертон П. и др. Циркулирующие базальные уровни антимюллерова гормона как предиктор реакции яичников у женщин, подвергающихся стимуляции яичников для экстракорпорального оплодотворения. Fertil Steril. 2009. 92: 1586–93.
CAS Статья Google Scholar

13.
Ли Дж. Э., Юн Ш., Ким Хо, Мин Э. Корреляция между соотношением лютеинизирующего гормона и фолликулостимулирующего гормона и уровнями антимюллерова гормона у нормоовуляторных женщин.J Korean Med Sci. 2015; 30: 296–300.
CAS Статья Google Scholar

14.
Hazout A, Bouchard P, Seifer DB, Aussage P, Junca AM, Cohen-Bacrie P. Сывороточный антимуллеров гормон / вещество, ингибирующее мюллериан, по-видимому, является более дискриминационным маркером исхода вспомогательных репродуктивных технологий, чем фолликулостимулирующее. гормон, ингибин B или эстрадиол. Fertil Steril. 2004; 82: 1323–9.
CAS Статья Google Scholar

15.
Yetim A, Yetim Ç, Baş F, Erol OB, ı G, Uçar A, et al. Антимюллеров гормон и ингибин-а, но не ингибин-B или инсулиноподобный пептид-3, могут использоваться в качестве суррогатов в диагностике синдрома поликистозных яичников у подростков: предварительные результаты. J Clin Res Pediatr Endocrinol. 2016; 8: 288–97.
Артикул Google Scholar

16.
Депманн М., Эйкеманс М.Дж., Броер С.Л., Шеффер Г.Дж., ван Ройдж И.А., Лавен Дж.С. и др. Предсказывает ли антимюллеров гормон менопаузу у населения в целом? Результаты продолжающегося проспективного когортного исследования.Hum Reprod. 2016; 31: 1579–87.
CAS Статья Google Scholar

17.
Hagen CP, Aksglaede L, Sørensen K, Mouritsen A, Andersson AM, Petersen JH, Main KM, Juul A. Индивидуальные сывороточные уровни антимюллерова гормона у здоровых девочек сохраняются в детстве и подростковом возрасте: продольная когорта изучение. Hum Reprod. 2012; 27: 861–6.
CAS Статья Google Scholar

18.
Racine C, Rey R, Forest MG, Louis F, Ferré A, Huhtaniemi I, Josso N, di Clemente N. Рецепторы антимюллерова гормона на клетки Лейдига ответственны за его влияние на стероидогенез и дифференцировку клеток. Proc Natl Acad Sci U S. A. 1998; 95: 594–9.
CAS Статья Google Scholar

19.
van Rooij IA, Broekmans FJ, Scheffer GJ, Looman CW, Habbema JD, de Jong FH, et al. Уровни антимуллерных гормонов в сыворотке лучше всего отражают снижение репродуктивной функции с возрастом у здоровых женщин с доказанной фертильностью: продольное исследование.Fertil Steril. 2005; 83: 979–87.
Артикул Google Scholar

20.
Блейл М.Э., Грегорих С.Е., Адлер Н.Е., Штернфельд Б., Розен М.П., Кедры М.И. Расовые / этнические различия в репродуктивном возрасте: исследование оценок резерва яичников в четырех расовых / этнических группах здоровых женщин, регулярно ездящих на велосипеде. Fertil Steril. 2014; 101: 199–207.
Артикул Google Scholar

21.
Хендерсон К.Д., Бернштейн Л., Хендерсон Б., Колонель Л., Пайк М.С. Предикторы времени естественной менопаузы в многоэтническом когортном исследовании. Am J Epidemiol. 2008. 167: 1287–94.
Артикул Google Scholar

22.
Сейфер Д.Б., Голуб Е.Т., Ламберт-Мессерлиан Дж., Беннинг Л., Анастос К., Уоттс Д.Х. и др. Различия в содержании вещества, ингибирующего мюллериан, у белых, чернокожих и испаноязычных женщин. Fertil Steril. 2009. 92: 1674–8.
Артикул Google Scholar

23.
Халифе Д., Нассар А., Халил А., Аввад Дж., Абу Муса А., Ханнун А., Эль-Таха Л., Халифе Ф., Абиад М., Газири Г. Совокупный коэффициент живорождений по возрасту матери после одного или нескольких циклов экстракорпорального оплодотворения: институциональный опыт. Int J Fertil Steril. 2020; 14: 34–40.
PubMed PubMed Central Google Scholar

24.
Lebkowska A, Adamska A, Karczewska-Kupczewska M, Nikołajuk A, Otziomek E, Milewski M, et al. Концентрация антимюллерова гормона в сыворотке крови у женщин с синдромом поликистозных яичников и сахарным диабетом 1 типа.Обмен веществ. 2016; 65: 804–11.
CAS Статья Google Scholar

25.
Барад Д.Х., Вегхофер А., Глейхер Н. Сравнение антимюллеровского гормона (АМГ) и фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) как предикторов функции яичников. Fertil Steril. 2009. 91: 1553–5.
CAS Статья Google Scholar

26.
Джамил З., Фатима С.С., Чима З., Баиг С., Чоудхари РА. Оценка яичникового резерва: антимюллеров гормон в сравнении с фолликулостимулирующим гормоном.J Res Med Sci. 2016; 21: 100.
Артикул Google Scholar

27.
La Marca A, Papaleo E, Grisendi V, Argento C, Giulini S, Volpe A. Разработка номограммы на основе маркеров овариального резерва для индивидуализации начальной дозы фолликулостимулирующего гормона при экстракорпоральном оплодотворении циклы. BJOG. 2012; 119: 1171–9.
Артикул Google Scholar

28.
Малини Н.А., Рой Г.К. Оценка различных диапазонов соотношений ЛГ: ФСГ при синдроме поликистозных яичников (СПКЯ) — клиническое исследование случай-контроль. Gen Comp Endocrinol. 2018; 260: 51–7.
CAS Статья Google Scholar

29.
Whitcomb BW, Bodach SD, Mumford SL, Perkins NJ, Trevisan M, Wactawski-Wende J, et al. Функция яичников и курение сигарет. Педиатр Перинат Эпидемиол. 2010; 24: 433–40.
Артикул Google Scholar

30.
Kofinas JD, Elias RT. Соотношение фолликулостимулирующий гормон / лютеинизирующий гормон как независимый предиктор ответа на контролируемую стимуляцию яичников. Женское здоровье. 2014; 10: 505–9.
Google Scholar

31.
Chun S. Уровень лютеинизирующего гормона в сыворотке крови и соотношение лютеинизирующего гормона / фолликулостимулирующего гормона, но не уровень антимюллерова гормона в сыворотке, связаны с объемом яичников у корейских женщин с синдромом поликистозных яичников.Clin Exp Reprod Med. 2014; 41: 86–91.
Артикул Google Scholar

32.
Kruszyńska A, Słowińska-Srzednicka J. Антимюллеров гормон (AMH) как хороший предиктор времени менопаузы. Прз Менопаузальный. 2017; 2: 47–50.
Google Scholar

33.
Magri F, Schena L, Capelli V, Gaiti M, Zerbini F, Brambilla E, et al. Антимюллеров гормон как предиктор овариального резерва в протоколах ВРТ: скрытая роль аутоиммунитета щитовидной железы.Репрод Биол Эндокринол. 2015; 13: 106.
Артикул Google Scholar

34.
Drakopoulos P, van de Vijver A, Schutyser V, Milatovic S, Anckaert E, Schiettecatte J, et al. Влияние уровней витамина D в сыворотке на маркеры резерва яичников: проспективное перекрестное исследование. Hum Reprod. 2017; 32: 208–14.
CAS PubMed Google Scholar

Высокий уровень ФСГ в сыворотке связан с образованием коричневых ооцитов и более низкой частотой наступления беременности при ЭКО человека — FullText — Cellular Physiology and Biochemistry 2016, Vol.39, № 2

Абстрактные

Предпосылки / цели: Изучить, влияет ли коричневая блестящая зона (ZP) ооцитов на исход оплодотворения, качество эмбрионов и частоту наступления беременности в in vitro оплодотворение-перенос эмбриона (ЭКО-ЭТ). Методы : на основании цвета ZP их ооцитов, всего 703 пациента, датированных с 2012 по 2014 год, были разделены на группу с нормальными яйцами (группа A) и группу коричневых ооцитов (группа B), с 629 и 74 случая соответственно.Клинические характеристики, гонадотропиновые (Gn) дни, дозировка Gn, уровни сывороточных гормонов в день инъекции хорионического гонадотропина человека (ХГЧ), толщина ZP (ZPT) яйцеклеток, частота оплодотворения, скорость интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов (rICSI) частота появления качественных эмбрионов и частота наступления беременности сравнивались между двумя группами. Результаты : Не было обнаружено значительных различий в продолжительности и причинах бесплодия, а также в их базальном уровне эндокринного гормона до ЭКО-ЭТ между группой с нормальным яйцом и группой с коричневым яйцом.Уровень гормона сыворотки, включая эстрадиол, прогестерон и лютеинизирующий гормон, в день инъекции ХГЧ снова был аналогичным. Более того, не было различий в количестве зрелых ооцитов, частоте оплодотворения ооцитов и частоте rICSI после ЭКО между двумя группами. Однако мы наблюдали, что ZPT коричневых ооцитов (группа B) был выше, чем у нормальных ооцитов (группа A). Более того, дозировка Gn и уровень ФСГ в день инъекции ХГЧ были значительно выше в группе B, чем в группе A, а частота эмбрионов хорошего качества и частота наступления беременности в группе B были ниже, чем в группе A. Заключение : Было обнаружено, что по сравнению с нормальными яйцами ооциты с коричневым ZP имеют более высокий ZPT, более низкое качество эмбриона и более низкую частоту наступления беременности, что может быть связано с инъекцией высокой дозы Gn и высоким уровнем ФСГ в сыворотке Циклы IVT-ET.

Введение

Получение высококачественных эмбрионов очень важно для повышения частоты клинических беременностей при in vitro оплодотворении-переносе эмбрионов (ЭКО-ЭТ).Качество ооцитов является одним из ключевых факторов, влияющих на частоту имплантации и наступления беременности при использовании вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) человека. В настоящее время морфологическая оценка является наиболее объективным методом оценки качества ооцитов, морфологические особенности яиц также используются для прогнозирования потенциала эмбрионального развития [1]. Ооциты MII хорошего качества оцениваются на основании нескольких характеристик, таких как чистое перивителлиновое пространство определенной толщины, хорошо распределенные цитоплазматические гранулярные частицы, а также полное первое полярное тельце и бледно-окрашенная блестящая оболочка (ZP) [2].В зависимости от локализации аномальной морфологии морфологические аномалии ооцитов можно разделить на внутрицитоплазматические и внецитоплазматические аномалии. Цитоплазматические аномалии включают аномальное распределение цитоплазматических гранул, аномалии гладкой эндоплазматической сети и сжиженный пузырь. Внецитоплазматические аномалии включают неправильную форму ооцита, увеличение перивителлинового пространства, фрагменты в перивителлиновом пространстве и аномалии вязкости мембраны ооцита и цвета, формы или толщины ZP.

Не было достигнуто единого мнения о влиянии морфологических аномалий ооцитов на оплодотворение, качество эмбриона и исходы беременности [3]. Некоторые исследования показали, что аномальные ооциты отрицательно влияют на оплодотворение, качество эмбрионов и исходы беременности [4,5,6,7]: частота наступления беременности и имплантации снижается с переносом эмбрионов, полученных из морфологически аномальных ооцитов [8,9]. Напротив, другие исследования показали, что ооциты с морфологическими аномалиями не влияли на результат оплодотворения [10,11,12], а потенциал развития эмбриона нельзя предсказать по морфологии его ооцита, если морфология не является крайне аномальной [13].

Созревание человеческого фолликула можно разделить на четыре стадии: примордиальный фолликул, первичный фолликул, вторичный фолликул и зрелый фолликул, независимо от естественного цикла или цикла стимулированной овуляции. Любые аномалии на этих этапах могут блокировать развитие фолликулов и вызывать морфологические аномалии в ооците. В процессе созревания ооцита ЗП постоянно изменяется. В большинстве случаев ZP кажется бледным, в то время как в некоторых случаях ZP кажется коричневым или черным.Ооциты с этим коричневым или черным ZP называются коричневыми ооцитами. Влияет ли цвет ZP на исход беременности, остается неизвестным. Некоторые отчеты показали, что коричневые ооциты не оказали значительного влияния на исходы беременности [14], в то время как другие предполагали, что коричневый ооцит может быть связан с более низким уровнем оплодотворения, имплантации или беременности [15].

Точные причины изменения цвета ZP остаются неизвестными. В этом исследовании мы собрали данные для всех коричневых ооцитов за последние два года (2012-2014 гг.) В нашем центре ЭКО в провинции Хубэй, Китай, и сравнили их клинические характеристики, использование хелатирующих агентов, базального гормона и суточного гормона ХГЧ. уровни.Мы проанализировали возможные причины, приводящие к изменению цвета ZP, и его влияние на скорость оплодотворения, качество эмбриона и частоту наступления беременности.

Материалы и методы

Популяция исследования

Был проведен ретроспективный анализ 703 пациентов, перенесших циклы ЭКО-ЭТ в Центре репродуктивной медицины больницы Жэньминь Медицинского университета Хубэй с февраля 2012 года по декабрь 2014 года. Эти пациенты были в возрасте 22-40 лет и имели бесплодие в течение 2-8 лет, исключая мужское бесплодие.Из 703 пациенток 468 случаев были связаны с трубным бесплодием, 153 случая нарушения овуляции, 32 эндометриозом, 23 синдромом поликистозных яичников (СПКЯ), 2 случая иммунного бесплодия и 25 бесплодием необъяснимого происхождения. Пациенты были разделены на две группы в зависимости от цвета ZP их ооцитов: 629 случаев с ооцитами нормального цвета в группе A (рис. 2, правая панель) и 74 случая с коричневыми ооцитами в группе B (рис. 2, слева). панель). Ооциты оказались коричневыми из-за коричневого цвета ZP, как показано на рис.3, где показана зигота, у которой ZP отделен от цитоплазмы ооцита. Исследование было одобрено Комитетом по репродуктивной медицинской этике больницы Шиян Ренминь с письменного информированного согласия, полученного от всех субъектов.

Рис. 2

Коричневый ооцит (слева) и нормальный ооцит (справа) (20 ×).

Рис. 3

Оплодотворенная яйцеклетка с коричневой блестящей оболочкой (20 ×).

Стимуляция яичников и мониторинг роста фолликулов

Длинный протокол гонадотропин-рилизинг-гормона (ГнРГ) использовался для всех пациентов [16] с ежедневными инъекциями 0.05 мг / день трипторелин, начиная с лютеиновой фазы последнего менструального цикла, для подавления активности гипофиза. Для стимуляции яичников использовали только гонал-F или с человеческим менопаузальным гонадотропином (HMG). За фолликулом следили с помощью ультразвука до тех пор, пока он не достигал 16-18 мм в диаметре, а затем останавливали с помощью ФСГ и ГМГ. Внутримышечно вводили 5000-10000 МЕ хорионического гонадотропина человека (ХГЧ) за 36 часов до извлечения фолликулов вместе с ооцитом с помощью трансвагинального ультразвукового исследования.

Измерение концентрации гормонов

Венозную кровь брали утром второго дня менструального цикла цикла контролируемой гиперстимуляции яичников (COH) дня введения ХГЧ. ФСГ, Е2, Ф и ЛГ измеряли с помощью автоматической системы электрохимического люминесцентного иммуноанализа DXI800. Наборы Access ESTRADIOL 3340 были приобретены у Beckman Coulter, Inc. (Часка, США).

Наблюдение за ооцитами и оценка оплодотворения

Все ооциты были оплодотворены посредством ЭКО, а качество их ооцитов оценивалось двумя профессиональными эмбриологами.Капилляр использовался для механической очистки гранулярных клеток вокруг ооцита. Цвет ооцитов не наблюдался. Также наблюдают, разрядилось ли второе полярное тельце после 4-6 часов оплодотворения. Ооциты с коричневой ЗП считались коричневыми ооцитами (рис. 2, левая панель). Оплодотворение считалось успешным только тогда, когда наблюдалось, что все ооциты выделили свое второе полярное тельце. В противном случае впоследствии была проведена процедура интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов (rICSI), и результат оплодотворения оценивался на основании появления пронуклеуса через 16-18 часов.Если появились две стадии пронуклеусов, мы повторно считали оплодотворение успешным.

Техника переноса эмбрионов

Процедура переноса эмбрионов выполнялась следующим образом. Сначала к катетеру для переноса эмбрионов подсоединяли шприц на 1 мл. Затем мы по очереди переносили эмбрионы следующим образом: 5 мкл питательной среды, 5 мкл воздуха, 8-10 мкл питательной среды, содержащей эмбрионы, 5 мкл воздуха, 5 мкл питательной среды. Наконец, мы доставили эмбрионы в матку. В этой процедуре эмбриолог должен тщательно проверить и убедиться, что в пробирке под микроскопом не осталось эмбрионов.

Культивирование эмбрионов и оценка беременности

После оплодотворения с помощью ЭКО или ИКСИ зиготы переносили в среду для культивирования эмбрионов на 24-48 часов. Морфологическую оценку эмбриона проводили на 3-й день после забора яйцеклетки (OPU) [17]. Эмбрионы величиной III и выше были жизнеспособными. Для переноса обычно предпочтительны эмбрионы с хорошей морфологией, такие как однородно распределенные бластомеры и меньшее количество фрагментов. Мы трансплантировали 2-3 эмбриона с помощью внутриматочного переноса эмбрионов под контролем УЗИ в зависимости от возраста пациента.Через четырнадцать дней после трансплантации эмбриона биохимическая беременность может быть обнаружена, а клиническая беременность определена путем успешного определения сердцебиения плода с помощью ультразвука через четыре недели после переноса эмбриона.

Статистический анализ

Данные о концентрациях гормонов и частоте наступления беременности обрабатывались с помощью статистической программы SPSS 13.0. Данные измерений представлены как средние значения ± стандартное отклонение, а различия между группами сравнивались с использованием двустороннего t-критерия.При необходимости показатели сравнивали с использованием критерия хи-квадрат. Статистически значимыми считались различия со значением P <0,05.

Результаты

Общее сравнение пациентов в группе коричневых ооцитов и нормальной группе

6742 ооцита, из которых 5824 были зрелыми, были собраны у 703 пациентов и разделены на две группы в зависимости от цвета ооцитов. Не наблюдалось значительных различий в отношении среднего возраста, индекса массы тела (ИМТ), продолжительности или причин бесплодия между пациентами в группах с коричневыми ооцитами и нормальными группами (Таблица 1).

Таблица 1

Сравнение клинических признаков между группами нормальных (группа A) и коричневых ооцитов (группа B) (% x̅ ± S). * ИМТ, индекс массы тела

Сравнение дозировки препарата и сывороточных гормонов при суперовуляции между двумя группами

Как показано в таблице 2, между двумя группами не было обнаружено значимых (P> 0,05) различий в базальных уровнях эндокринных гормонов на 3-й день. ; в среднем количество дней с лекарством; или в уровнях E2, LH или P в день инъекции HCG.Однако различия в среднем количестве Gn и уровнях ФСГ в сыворотке в день введения ХГЧ были значительными: 13,6 ± 6,1 в нормальной группе против 17,5 ± 8,1 в группе коричневых ооцитов (P <0,05).

Таблица 2

Сравнение стимулированного процесса овуляции между двумя группами (% x̅ ± S). * Количество Gn, 75 Ед / ампула. ФСГ, фолликулостимулирующий гормон; ЛГ, лютеинизирующий гормон; E2, эстрадиол; P, прогестерон

Сравнение результатов оплодотворения между двумя группами

2819 высококачественных эмбрионов были успешно получены из 5824 зрелых ооцитов.Не было значимых (P> 0,05) различий в среднем количестве яиц, скорости созревания яиц, скорости оплодотворения, скорости rICSI и количестве эмбрионов хорошего качества между группой коричневых ооцитов и нормальной группой (Таблица 3). Однако средняя толщина ZP в группе коричневых ооцитов была выше, чем у нормальной группы (P <0,05), а показатели высококачественного эмбриона и клинической беременности были ниже, чем у нормальной группы (P <0,05).

Таблица 3

Сравнение результатов оплодотворения между двумя группами (% x̅ ± S).* Процесс созревания ооцитов на стадии MII; ** 2-пронуклеарная стадия; *** Rescue ICSI, Спасательная интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов

Обсуждение

По сравнению с нормальными ооцитами, ZP коричневых ооцитов показали аномальные изменения цвета и были полупрозрачным коричневым цветом в нашем исследовании. Сообщений о причинах или механизмах образования коричневых ооцитов немного. Наше исследование предполагает, что возможная причина образования ооцитов с коричневой ЗП не связана со средним возрастом бесплодных пациентов или с причиной и продолжительностью бесплодия.Предыдущие исследования не показали значительной корреляции между цветом ооцитов и клиническим исходом беременности, но предположили, что появление коричневых ооцитов могло быть вызвано стимуляцией яичников [18].

Экзогенный ФСГ обычно используется для ускорения созревания фолликулов с целью получения достаточного количества ооцитов в циклах ЭКО, в которых высококачественные эмбрионы могут быть отобраны после IVT для переноса. Экзогенный ФСГ может влиять на дифференцировку и рост клеток гранулезы, а также на развитие фолликулов яичников.Соответствующая доза ФСГ не оказывает значительного влияния на экспрессию генов ооцитов и гранулярных клеток. Однако высокая доза ФСГ изменит характер экспрессии генов в антральных фолликулярных и гранулярных клетках, что обычно приводит к дисфункции гранулярных клеток и аномальному развитию ооцитов. Исследования показали, что высокие дозы экзогенных гормонов, особенно ФСГ, вводимые в циклах ЭКО-ЭТ, вызывают морфологические аномалии ооцитов, включая аномалии ZP, цитоплазмы и полярного тельца [19].Мин Ли и др. показали, что действие экзогенного ФСГ на ооциты и эмбрионы зависит от его концентрации и что высокие дозы ФСГ снижают качество ооцитов и эмбрионов [20].

В этом исследовании большинство клеток гранулезы коричневых ооцитов были хорошо разбросаны, но были темными и агрегированными (рис. 1), что указывает на то, что клетки гранулезы могли быть преждевременными. ZP в основном состоит из гликопротеинов (ZP1, ZP2 и ZP3 у мышей), которые секретируются ооцитами и клетками гранулезы. Выключив ген ZP гликопротеина ZP1 в эмбриональных стволовых клетках мышей, Рэнкин обнаружил, что структура ZP их ооцитов была более рыхлой с увеличенным перивителлиновым пространством [21].Кроме того, направленный мутагенез ZP1 также приводит к гетерогенному распределению клеток гранулезы вокруг ооцита и неполному матриксу ZP. Эти изменения предполагали аномальный синтез или секрецию белка ZP гранулезными клетками [22]. В наших результатах появление коричневых ЗП коррелирует с высокой дозировкой экзогенного ФСГ, указывая на то, что высокая доза экзогенного ФСГ может приводить к коричневым ЗП. Возможно, что высокая доза экзогенного ФСГ постоянно попадает в фолликулярную жидкость, что приводит к аномальному синтезу и секреции белка ZP гранулезными клетками.В конечном итоге это приводит к преждевременным зернистым клеткам с чрезмерно диспергированным или агглютинированным видом.

Рис.1

Cumulus oophorus ооцита с коричневой блестящей оболочкой (4 ×).

Как показано в таблице 3, количество высококачественных эмбрионов и частота наступления беременности в группе коричневых ооцитов были значительно ниже, чем в группе нормальных ооцитов, что указывает на то, что коричневые ооциты влияют на развитие эмбриона. В нашем исследовании клиническая беременность определялась как наличие внутриматочного гестационного мешка при трансвагинальном ультразвуковом исследовании.Мы не измеряли концентрацию АМГ [23,24,25].

Большинство коричневых ооцитов имеют более толстую ZP, которая кажется более темной, чем нормальные. Толщина ZP в индивидуальных преэмбрионах была предложена как маркер нормального преэмбрионального развития человека, потому что наблюдалась корреляция между толщиной ZP и имплантацией как оттаявших, так и свежих преэмбрионов [26,27]. Более тонкая часть блестящей оболочки, скорее всего, необходима для соответствующего вылупления на стадии бластоцисты. Более толстые преэмбрионы ZP снижают потенциал имплантации во время вылупления, и, как следствие, частота высококачественных эмбрионов и частота клинической беременности ниже.У нас неполные данные о живорождении.

В заключение, высокие уровни ФСГ в сыворотке во время цикла ЭКО-ЭТ коррелировали с образованием коричневых ооцитов и влияли на развитие эмбриона, что приводило к снижению частоты наступления беременности. Напротив, не наблюдалось значительной корреляции между образованием коричневых ооцитов и состояниями пациентов, такими как возраст, ИМТ или продолжительность и причины бесплодия. Следовательно, ограничение дозы ФСГ во время контролируемой гиперстимуляции яичников важно для производства высококачественных ооцитов.

Благодарности

Это исследование финансировалось грантами Национального фонда естественных наук Китая (81401200), Фонда естественных наук провинции Хубэй Китая (2013CFB479), научно-исследовательскими и опытно-конструкторскими проектами Шияна (15Y41 / 14K69) и проект «Ключевые дисциплины» провинции Хубэй (2014XKJSSJ08).

Заявление о раскрытии информации

Все авторы согласны с содержанием этой рукописи. Авторы объявили, что нет никаких конфликтов интересов.

Список литературы

Уилдинг М., Ди Маттео Л., Д’Андретти С., Монтанаро Н., Капобианко С., Дейл Б. Оценка ооцитов для использования при вспомогательной репродукции. Дж. Ассист Репрод Генет 2007; 24: 350-358.
Veeck LL: Оценка ооцитов и биологические показатели.Ann N Y Acad Sci 1988; 541: 259-274.
Риенци Л., Вайта Г., Убалди Ф .: Прогностическая ценность морфологии ооцитов при ЭКО человека: систематический обзор литературы. Обновление Hum Reprod 2011; 17: 34-45.
Аликани М., Палермо Г., Адлер А., Бертоли М., Блейк М., Коэн Дж.: Интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов в дисморфные ооциты человека.Зигота 1995; 3: 283-288.
Тен Дж., Мендиола Дж., Виоке Дж., Де Хуан Дж., Бернабеу Р: Дисморфизмы донорских ооцитов и их влияние на оплодотворение и качество эмбрионов. Reprod Biomed Online 2007; 14: 40-48.
Риенци Л., Балабан Б., Эбнер Т., Мандельбаум Дж .: Ооцит.Репродукция Человека 2012; 27: i2-21.
Ван Блерком Дж., Генри Дж.: Дисморфизм и анеуплоидия ооцитов в мейотически зрелых ооцитах человека после стимуляции яичников. Hum Reprod 1992; 7: 379-390.
Ся П: Интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов: корреляция качества ооцитов на основе полярных тельцов, перивителлинового пространства и цитоплазматических включений со скоростью оплодотворения и качеством эмбриона.Репродукция Человека 1997; 12: 1750-1755.
Meriano JS, Alexis J, Visram-Zaver S, Cruz M, Casper RF: Отслеживание дисморфизма ооцитов у пациентов с ИКСИ может оказаться значимым для результата в последующих циклах пациентов. Репродукция человека 2001; 16: 2118-2123.
Эсфандиари Н., Райан Э.А., Готлиб Л., Каспер РФ: Успешная беременность после переноса эмбрионов из ооцитов с аномальной блестящей оболочкой и морфологией цитоплазмы.Reprod Biomed Online 2005; 11: 620-623.
Balaban B, Urman B, Sertac A, Alatas C, Aksoy S, Mercan R: Морфология ооцитов не влияет на скорость оплодотворения, качество эмбриона и скорость имплантации после интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов. Репродукция Человека 1998; 13: 3431-3433.
Де Саттер П., Дозорцев Д., Цянь С., Дхонт М.: Морфология ооцитов не коррелирует со скоростью оплодотворения и качеством эмбриона после интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов.Репродукция Человека 1996; 11: 595-597.
Балабан Б., Ата Б., Исиклар А., Якин К., Урман Б. Тяжелые цитоплазматические аномалии ооцитов снижают криосохранение и последующее эмбриональное развитие криоконсервированных эмбрионов. Репродукция человека 2008; 23: 1778-1785.
Эсфандиари Н., Бурджак Х, Готлиб Л., Каспер РФ: Коричневые ооциты: значение для вспомогательных репродуктивных технологий.Fertil Steril 2006; 86: 1522-1525.
Shi W, Xu B, Wu LM, Jin RT, Luan HB, Luo LH, Zhu Q, Johansson L, Liu YS, Tong XH: ооциты с темной блестящей оболочкой демонстрируют более низкую частоту оплодотворения, имплантации и клинической беременности в циклах ЭКО / ИКСИ . PLoS One 2014; 9: e89409.
Wu YT, Wang TT, Chen XJ, Zhu XM, Dong MY, Sheng JZ, Xu CM, Huang HF: Костный морфогенетический белок-15 в фолликулярной жидкости в сочетании с возрастом может различать успешных и неудачных пациентов с плохим ответом яичников.Репрод Биол Эндокринол 2012; 10: 116.
Зибе С., Петерсен К., Линденберг С., Андерсен А.Г., Габриэльсен А., Андерсен А.Н.: Морфология эмбриона или стадия дробления: как выбрать лучшие эмбрионы для переноса после экстракорпорального оплодотворения. Hum Reprod 1997; 12: 1545-1549.
Санчес Ф, Адриаенсенс Т, Ромеро С., Смитц Дж .: Различные режимы воздействия фолликулостимулирующего гормона во время роста антрального фолликула изменяют экспрессию гена в комплексе кумулюс-ооцит у мышей.Биол Репрод 2010; 83: 514-524.
O’Callaghan D, Yaakub H, Hyttel P, Spicer LJ, Boland MP: Влияние питания и суперовуляции на морфологию ооцитов, состав фолликулярной жидкости и системные концентрации гормонов у овец. J. Reprod Fertil 2000; 118: 303-313.
Li M, Zhao Y, Zhao CH, Yan J, Yan YL, Rong L, Liu P, Feng HL, Yu Y, Qiao J: Высокий ФСГ снижает потенциал развития ооцитов мышей и, как следствие, оплодотворенных эмбрионов, но не влияет на физиологию потомства и поведение in vitro или in vivo .Репродукция Человека 2013; 28: 1309-1323.
Ранкин Т., Талбот П., Ли Е., Дин Дж.: Аномальные zonae pellucidae у мышей, лишенных ZP1, приводят к ранней эмбриональной потере. Разработка 1999; 126: 3847-3855.
Monne M, Han L, Jovine L: Отслеживание домена ZP: от блестящей оболочки млекопитающих до желточной оболочки моллюсков.Семин Репрод Мед 2006; 24: 204-216.
Peluso C, Fonseca FL, Gastaldo GG, Christofolini DM, Cordts EB, Barbosa CP, Bianco B: полиморфизмы AMH и AMHR2 и уровень AMH в сыворотке могут предсказать исходы вспомогательной репродукции: перекрестное исследование. Cell Physiol Biochem 2015; 35: 1401-1412.
Чжао C, Лю X, Ши З, Чжан Дж, Цзя X, Лин X: Роль сывороточных miRNAs в прогнозировании синдрома гиперстимуляции яичников у пациентов с синдромом поликистозных яичников. Cell Physiol Biochem 2015; 35: 1086-1094.
Trevisan CM, Peluso C, Cordts EB, de Oliveira R, Christofolini DM, Barbosa CP, Bianco B: полиморфизмы Ala307Thr и Asn680Ser гена FSHR в результатах воспроизводства человека.Cell Physiol Biochem 2014; 34: 1527-1535.
Palmstierna M, Murkes D, Csemiczky G, Andersson O, Wramsby H: Изменение толщины Zona pellucida и появление видимых одноядерных бластомеров у преэмбрионов связаны с высокой частотой наступления беременности при лечении ЭКО. Дж. Ассист Репрод Генет 1998; 15: 70-75.
Zhou HX, Ma YZ, Liu YL, Chen Y, Zhou CJ, Wu SN, Shen JP, Liang CG: Оценка качества ооцитов на стадии зародышевых пузырьков мышей путем оценки кумулюсного слоя, блестящей оболочки и перивителлинового пространства. PLoS One 2014; 9: e105812.

Автор Контакты

Чанцзюнь Чжан

Центр репродуктивной медицины, больница Жэньминь, Медицинский университет Хубэй,

Шиянь 442000, (Китай)

Электронная почта changjunzhang @ hotmail.com

Подробности статьи / публикации

Предварительный просмотр первой страницы

Одобрена: 15 июня 2016 г.
Опубликована онлайн: 21 июля 2016 г.
Дата выпуска: июль 2016 г.

Количество страниц для печати: 8
Количество рисунков: 3
Количество столов: 3

ISSN: 1015-8987 (печатный)
eISSN: 1421-9778 (онлайн)

Для дополнительной информации: https: // www.karger.com/CPB

Лицензия открытого доступа / Дозировка лекарства / Заявление об ограничении ответственности

Эта статья находится под международной лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 (CC BY-NC-ND). Использование и распространение в коммерческих целях, а также любое распространение измененных материалов требует письменного разрешения. Дозировка лекарств: авторы и издатель приложили все усилия, чтобы гарантировать, что выбор и дозировка лекарств, указанные в этом тексте, соответствуют текущим рекомендациям и практике на момент публикации.Однако с учетом продолжающихся исследований, изменений в правительственных постановлениях и постоянного потока информации, касающейся лекарственной терапии и реакций на них, читателю рекомендуется проверять листок-вкладыш для каждого препарата на предмет любых изменений показаний и дозировки, а также дополнительных предупреждений. и меры предосторожности. Это особенно важно, когда рекомендованным агентом является новый и / или редко применяемый препарат. Отказ от ответственности: утверждения, мнения и данные, содержащиеся в этой публикации, принадлежат исключительно отдельным авторам и соавторам, а не издателям и редакторам.Появление в публикации рекламы и / или ссылок на продукты не является гарантией, одобрением или одобрением рекламируемых продуктов или услуг или их эффективности, качества или безопасности. Издатель и редактор (-ы) не несут ответственности за любой ущерб, причиненный людям или имуществу в результате любых идей, методов, инструкций или продуктов, упомянутых в контенте или рекламе.

Профилирование изменений экспрессии генов, индуцированных фолликулостимулирующим гормоном, в нормальных и злокачественных эпителиальных клетках яичников человека

Ala-Fossi, SL, Grenman S, Zhang FP, Blaue, M, Punnonen R and Maenpaa J.(1999). Anticancer Res. , 19 , 4289–4295.

Альтшулер Д.Л., Петерсон С.Н., Островски М.С. и Лапетина Э.Г. (1995). J. Biol. Chem. , 270 , 10373–10376.

Auersperg N, Wong AS, Choi KC, Kang SK и Leung PC. (2001). Endocr. Ред. , 22, , 255–288.

Баст Р.С. младший, Фини М., Лазарус Х., Надлер Л.М., Колвин Р.Б. и Кнапп Р.С. (1981). J. Clin. Вкладывать деньги. , 68 , 1331–1337.

Бильбе Дж., Делаби Дж., Брюгген Дж., Ришенер Х., Ассельбергс Ф.А., Черлетти Н., Сорг С., Одинк К. Tarcsay L, Wiesendanger W и др. . (1992). EMBO J. , 11 , 2103–2113.

Callow ME, Callow JA, Ista LK, Coleman SE, Nolasco AC и Lopez GP. (2000). Заявл. Environ. Microbiol. , 66 , 3249–3254.

Cao SX, Dhahbi JM, Mote PL и Spindler SR. (2001). Proc. Natl. Акад.Sci. , 98 , 10630–10635.

Коэн П. (1989). Annu. Rev. Biochem. , 58, , 453–508.

Conroy SE и Latchman DS. (1996). руб. J. Cancer , 74 , 717–721.

Cramer DW, Liberman RF, Hornstein MD, McShane P, Powers D, Li EY и Barbieri R. (1998). Fertil. Стерил. , 70 , 371–373.

Dujardin D, Wacke, UJ, Moreau A, Schroer TA, Rickard JE и DeMey JR.(1998). J. Cell. Биол. , 141 , 849–862.

Emons G, Ortmann O, Teichert HM, Fassl H, Lohrs U, Kullander S, Kauppila A, Ayalon D, Schally A и Oberheuser F. (1996). Рак , 78 , 1452–1460.

Эриксон Г.Ф., Ли Д., Садрханлоо Р., Лю XJ, Шимасаки С. и Линг Н. (1994). Эндокринология , 134 , 1365–1372.

Фили К.М. и Уэллс М. (2001). Гистопатология , 38 , 87–95.

Фуллер-Пейс FV. (1994). Trends Cell Biol. , 4 , 271–274.

Fuqua SA, Oesterreich S, Hilsenbeck SG, Von Hoff DD, Eckardt J and Osborne CK. (1994). Breast Cancer Res. Рассматривать. , 32 , 67–71.

Gillett WR, Mitchell A и Hurst PR. (1999). Гум. Репродукция. , 6 , 645–650.

Годвин А.К., Теста-младший и Гамильтон Т.К. (1993). Рак , 71 , 530–536.

Гальперин Р., Хадас Э., Лангер Р., Буковский И. и Шнайдер Д. (1999). Внутр. J. Gynecol. Рак , 9 , 502–507.

Гамильтон ТК. (1992). Curr. Пробл. Рак , 16 , 1–57.

Heizisouer KJ, Alberg A, Gordan GB, Longcope C, Bush TL, Hoffman SC и Comstock GW. (1995). JAMA , 274 , 1926–1930.

Hilliker C, Delabie J, Speleman F, Bilbe G, Bruggen J, Van Leuven F и Van den Berghe H.(1994). Cytogenet. Cell Genet. , 65 , 172–176.

Hofstra LS, Mourits MJ, de Vries EG, Mulder NH и Willemse PH. (1999). Anticancer Res. , 19 , 3627–3630.

Holschneider CH и Berek JS. (2000). Семин. Surg. Онкол. , 19 , 3–10.

Hough CD, Cho KR, Zonderman AB, Schwartz DR и Morin PJ. (2001). Cancer Res. , 61 , 3869–3876.

Исмаил Р.С., Болдуин Р.Л., Фанг Дж., Браунинг Д., Карлан Б.А., Гассон Д.С. и Чанг Д.Д. (2000). Cancer Res. , 60 , 6744–6749.

Ито К., Йошиока К., Акедо Х, Уэхата М., Ишизаки Т. и Нарумия С. (1999). Нат. Med. , 5 , 221–225.

Иварссон К., Сундфельдт К., Браннстрем М., Хеллберг П. и Янсон П.О. (2001). Гум. Репродукция. , 16 , 18–23.

Кониси И., Курода Х. и Манда М.(1999). Онкология , 57 , 45–48.

Лау К.М., Мок С.К. и Хо С.М. (1999). Proc. Natl. Акад. Sci. США , 96 , 5722–5727.

Lee CK, Klopp RG, Weindruch R и Prolla TA. (1999). Science , 285 , 1390–1393.

Ли Х.М., Грили-младший Г.Х. и Энгландер Э.В. (2001). мех. Aging Dev. , 122 , 355–371.

Ли М., Маккинье А. и Дамуни З.(1996). J. Biol. Chem. , 271 , 11059–11062.

Мандаи М., Кониси И., Курода Х., Фукумото М., Комацу Т., Ямамото С., Нанбу К., Рао К.В. и Мори Т. (1997). Eur. J. Cancer , 33 , 1501–1507.

Маримото Р.И., Тиссьер А. и Георгопулос С. (1994.) Биология белков теплового шока и молекулярных шаперонов . Лабораторный пресс Колд-Спринг-Харбор: Колд-Спринг-Харбор, Нью-Йорк.

Google Scholar

Markert JM, Fuller CM, Gillespie GY, Bubien JK, McLean LA, Hong RL, Lee K, Gullans SR, Mapstone TB и Benos DJ.(2001). Physiol. Genomics , 5 , 21–33.

Мэтью А., Матур С.К. и Моримото Р.И. (1998). Мол. Клетка. Биол. , 18 , 5091–5098.

Мейерхардт JA, Look AT, Bigner SH и Fearon ER. (1997). Онкоген , 14 , 1129–1136.

Mukherjee A, Urban J, Sassone-Corsi P и Mayo KE. (1998). Мол. Эндокринол. Эндокринол. , 12 , 785–800.

Оливер С.Дж. и Шеноликар С.(1998). Фронт. Biosci. , 3 , 961–962.

Оно К., Танака Т., Цунода Т., Китахара О, Кихара С., Окамото А., Очиаи К., Такаги Т. и Накамура Ю. (2000). Cancer Res. , 60 , 5007–5011.

Пэррот Дж. А., Дорайсвами В., Ким Дж., Мошер Р. и Скиннер М. К.. (2001). Мол. Клеточный эндокринол. , 172 , 213–222.

Poerre P, Scheel J, Rickard JE и Kreis TE. (1992). Ячейка , 70 , 887–900.

Рао Б.Р. и Слотман Б.Дж. (1999). Endocr. Ред. , 12 , 14–26.

Раух-Адельманн К., Лау К.М., Сабети Н., Лонг Дж. П., Мок С. К. и Хо С. М.. (2000). Мол. Carcin. , 28 , 236–246.

Рикард Дж. Э. и Крайс Т. Э. (1996). Trends Cell Biol. , 6 , 178–183.

Risch HA. (1998). J. Natl. Cancer Inst. , 90 , 1774–1786.

Сассоне-Корси П.(1998). Внутр. J. Biochem. Cell Biol. , 30 , 27–38.

Шмид С.Р. и Линдер П. (1992). Мол. Microbiol. , 6 , 283–292.

Schummer M, Ng WV, Bumgarner RE, Nelson PS, Schummer B, Bednarsk, DW, Hassell L, Baldwin RL. Карлан Б.Ю. и Худ Л. (1999). Ген 238 , 375–385.

Шридхар В., Ли Дж., Пандита А., Итуррия С., Авула Р., Стауб Дж., Моррисси М., Калхун Е., Сен А., Калли К., Кини Дж., Рош П., Клиби В., Лу К., Шмандт Р., Миллс ГБ, Баст-младший Р.С., Джеймс С.Д., Коуч Ф.Дж., Хартманн Л.С., Лилли Дж. И Смит Д.И.(2001). Cancer Res. , 61 , 5895–5904.

Шушан А., Палтиэль О, Искович Дж., Эльчалал Ю., Перец Т. и Шенкер Дж. (1996). Fertil. Стерил. , 65 , 13–18.

Сайед В., Улински Г., Мок С.С. и Хо С.М. (2002). J. Natl. Cancer Inst. , 94 , 617–629.

Сайед В., Улински Г., Мок С.К., Ю Г.К. и Хо С.М. (2001). Cancer Res. , 61 , 6768–6776.

Tsao SW, Mok SC, Fey E, Fletcher J, Muto MG, Knapp RC и Berkowitz RS. (1995). Exp. Клетка. Res. , 218 , 499–507.

Цукамото Н., Хаттори М., Ян Х., Бос Дж. Л. и Минато Н.. (1999). J. Biol. Chem. , 274 , 18463–18469.

Venema J, Bousquet-Antonelli C, Gelugne JP, Caizergues-Ferrer M и Tollervey D. (1997). Мол. Клетка. Биол. , 17, , 3398–3407.

Вильметтер Дж., Кайем Дж. Ф., Роман Дж. М. и Дрейер В. Дж..(1994). J. Cell. Биол. , 127 , 2009–2020 гг.

Vossler MR, Yao H, York RD, Pan MG, Rim CS и Stork PJ. (1997). Ячейка , 89 , 73–82.

Ван С., Кауфман Дж. А., Санчес-Росс М. Г. и Джонсон К. М.. (2000). J. Pharmacol. Exp. Ther. , 294 , 287–295.

Ван К., Ган Л., Джеффри Е., Гейл М., Гоун А.М., Скелли М., Нельсон П.С., Нью-Йорк В.В., Шаммер М., Худ Л. и Маллиган Дж. (1999). Ген , 229 , 101–108.

Вани М.А., Денко Н.С. и Стамбрук П.Дж. (1997). сом. Клетка. Мол. Genet. , 23 , 123–133.

Валлийский Дж. Б., Зарринкар П. П., Сапинозо Л. М., Керн С. Г., Белинг Калифорния, Монк Б. Дж., Локхарт Д. Д., Бургер Р. А. и Хэмптон Г. М.. (2001). Proc. Natl. Акад. Sci. США , 98 , 1176–1181.

Wera S и Hemmings BA. (1994). Biochem. J. , 311 , 17–29.

Виттемор А.С., Харрис Р. и Итнир Дж. (1992. Am. J. Epidemiol. , 136 , 1184–1203.

Yang YH, Dudoit S, Luu P, Lin DM, Peng V, Ngai J and Speed TP. (2000). ). Nucleic Acids Res., 30 , e15.

Zheng W, Lu, JJ, Luo F, Zheng Y, Feng Yj, Felix JC, Lauchlan SC и Pike MC. (2000). Gynecol. Oncol. , 76 , 80–88.

Чжэн В., Магид М.С., Крамер Е.Е. и Чен Ю.Т.(1996). г. J. Pathol. , 148 , 47–53.

Amazon.com: 10x10ft океан виниловая стена фотография фон, кораллы с тропическим фоном Fsh фон для фотосессии фон экран видео запись вечеринки занавес (только фон): камера и фото

Размер: 10’x10 ‘ | Цвет: Печатный фон 12

Характеристики ：

1. Материал: Изготовлен из высококачественного материала, он прочный, легко складывается, легко переносится, легко повесить прямо или естественно.

2. Продукция изготовлена из высокотехнологичного цифрового производственного оборудования, цифровых фотоизображений, цифрового фона ярких цветов, богатых и разнообразных узоров, реалистичного изображения. Он идеально подходит для любой профессиональной или частной фотографии. Его можно использовать во многих ситуациях, например, для встреч, мероприятий, выпускных, свадеб, работы, любых крупных мероприятий или украшений и т. Д.

3. Виниловую ткань нельзя стирать. .Подтрите пятно влажной тканью.

4. Десятки тысяч реалистичных узоров.

5. У нас очень профессиональная фабрика и поставщик фотофонов.

Фон может также использоваться в студийных фонах, сценах / событиях, покрытиях стола / бегунах / тканях, простынях, оконных шторах, фоне пресс-конференций.

Принимаются любые индивидуальные размеры, мы подтверждаем 5x5ft, 6x6ft, 7x7ft, 8x8ft, 10x10ft, поликоттон или виниловую ткань. Пожалуйста, свяжитесь с нами, если вам нужен фон другого размера!

Цвет может немного отличаться от изображения из-за влияния света и настроек монитора компьютера.Допускается погрешность в 1-3 см.

Примечание:

Для облегчения транспортировки и упаковки товар будет отправлен в сложенном виде. Так получается складка. Но это не влияет на использование. Существуют следующие методы восстановления:

1. Устраните складки, равномерно растягивая все стороны (используйте подставки для фона, зажимы для фона, зажимы).

2. Плотно скатайте его цилиндром и подождите от 2 до 4 дней, и складки станут почти незаметными.

3.Пожалуйста, погладьте заднюю поверхность паровым утюгом, но не сухим утюгом. Гладить на слабом огне. Складка будет удалена.

Советы:

Если у вас есть вопросы, свяжитесь с нами, и мы ответим вам в кратчайшие сроки. Пожалуйста, не стесняйтесь обращаться к нам, если вы недовольны или получите свой вопрос.

Влияние перорального приема порошков красного перца (Capsicum annuum) и черного перца (Piper nigrum) на плазменные уровни гипофиза — гормоны оси гонад у самцов мышей

1-1- магистр физиологии животных, кафедра биологии, факультет естественных наук, университет Рази, Керманшах, Иран.
2-2- Доцент кафедры физиологии животных, кафедра биологии, факультет естественных наук, Университет Рази, Керманшах, Иран, [email protected]

Справочная информация: Любые виды перца широко используются в народной медицине. Перец может влиять на секрецию гормонов гипофизарно-гонадной системы.

Цель: Это исследование было проведено с целью изучить возможное влияние черного и красного перца на сывороточные уровни Лютеинизирующий гормон (ЛГ), Фолликулостимулирующий гормон (ФСГ) и гормон тестостерон.

Методы: 21 самец мыши NMRI был разделен на три группы (n = 7): , состоящую из , контрольную группу и две группы лечения , получавших красный перец и черный перец, соответственно . Группы, подвергшиеся лечению, получали порошок перца, смешанный с гранулированным кормом, в соотношении 6/6% в течение одного месяца. По окончании лечения животных анестезировали хлороформом и отбирали пробы крови непосредственно из сердца. После отделения сыворотки измеряли гормоны ЛГ, ФСГ и тестостерон методом ELISA. Статические данные Была проведена и рассчитана оценка с использованием однофакторного дисперсионного анализа с последующим тестом Тьюки для дисперсионного анализа.

Результаты: Красный перец повысил уровень тестостерона (P <0,01). Красный перец и черный перец повышали уровень ФСГ (P <0,001) и P <0,01 соответственно) и не влияли на уровень ЛГ. Уровни гематокрита также увеличились в группах лечения (P <0,001).

Заключение: Пероральный прием порошка красного и черного перца оказывает повышенное влияние на ФСГ и гормоны тестостерона.

Черный фон для фш: Фоны для Фотошопа: черные

Как сделать черный фон в Фотошопе

Создание черного фона

Способ 1: вырезание

Способ 2: самый быстрый

Способ 3: инверсия

Помогла ли вам эта статья?

Черный фон для Фотошопа: скачивайте или делайте сами

Творческий метод

Скачать готовый фон

Простой и быстрый метод

Видео инструкция

Черные фоны для фотошопа. Как сделать черный фон в фотошоп

Инструкция

Как в фотошопе сделать черный и белый фон правильно

Фотошоп: черно белый фон

Сделать черный фон в Фотошопе

Сделать черный фон в Фотошопе

Как сделать черный фон в Фотошопе • Дигмаст

Почему PNG с черным фоном: решено — МирДоступа

Черный фон PNG на OS X

Черный фон для фотошопа

Работа с фоном, способы замены и создание маски картинки

Создаем светлый фон

Как сделать маску?

Создаем темный фон

Создание фона для нового изображения

Как сделать размытый фон в фотошопе?

Влияние генетического фона на реакцию на суперовуляцию у японского черного крупного рогатого скота

Hiroki HIRAYAMA

Akira NAITO

Такаши ФУДЗИИ

Тоширо ТАКЕДОМИ

Hitomi SAKAI

Соичи КАГЕЯМА

Abstract

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Суперовуляция и сбор эмбрионов

Генотипирование GRIA1 и FSHR

Таблица 1.

Концентрация AMH в плазме

Статистический анализ

Таблица 2.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Таблица 3.

Таблица 4.

Таблица 5.

ОБСУЖДЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Фолликулостимулирующий гормон (ФСГ) | Лабораторные тесты онлайн

Абстрактные

Введение

Материалы и методы

Популяция исследования

Рис. 2

Рис. 3

Стимуляция яичников и мониторинг роста фолликулов

Измерение концентрации гормонов

Наблюдение за ооцитами и оценка оплодотворения

Техника переноса эмбрионов

Культивирование эмбрионов и оценка беременности

Статистический анализ

Результаты

Общее сравнение пациентов в группе коричневых ооцитов и нормальной группе

Таблица 1

Сравнение дозировки препарата и сывороточных гормонов при суперовуляции между двумя группами

Таблица 2

Сравнение результатов оплодотворения между двумя группами

Таблица 3

Обсуждение

Рис.1

Благодарности

Заявление о раскрытии информации

Список литературы

Автор Контакты

Подробности статьи / публикации

Лицензия открытого доступа / Дозировка лекарства / Заявление об ограничении ответственности

Влияние перорального приема порошков красного перца (Capsicum annuum) и черного перца (Piper nigrum) на плазменные уровни гипофиза — гормоны оси гонад у самцов мышей

Добавить комментарий Отменить ответ